Ir al menú de navegación principal Ir al contenido principal Ir al pie de página del sitio

Vol. 9 Núm. 1 (2018)
Vol 9, Núm. 1 (2018): Enero - Junio

Artículos de investigación / Research papers

Propagación y Tuberización In Vitro de dos variedades de Papa

https://doi.org/10.19053/01217488.v9.n1.2018.7132

Publicado 2018-02-06

  • Eyda Johanna Araque Barrera
    • ,
  • María de los Angeles Bohórquez Quintero
    • ,
  • José Estiben Pacheco Díaz
    • ,
  • Lenny Yojana Correa Mora
    • ,
  • Johan Sebastian Urquijo Ruiz
    • ,
  • Sandra Liliana Castañeda Garzón
    • ,
  • José Constantino Pacheco Maldonado

Eyda Johanna Araque Barrera
Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia

María de los Angeles Bohórquez Quintero
Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia

José Estiben Pacheco Díaz
Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia

Lenny Yojana Correa Mora
Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia

Johan Sebastian Urquijo Ruiz


Sandra Liliana Castañeda Garzón


José Constantino Pacheco Maldonado


Resumen

La investigación se realizó en el Laboratorio de Cultivo de Tejidos Vegetales de la Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia con el propósito de conocer el comportamiento in vitro y evaluar una metodología para propagación de plántulas y producción de microtubérculos de dos variedades de papa (Solanum tuberosum L. ssp andígena) Diacol Capiro y Parda Pastusa, a partir de segmentos nodales obtenidos de tubérculos suministrados por el ICA, desinfectados con NaOCl al 10 %, multiplicados en medio MS y MS+ANA (0.02 mg L-1) y enraizados con ANA o AIB adicionados al medio de cultivo o aplicados en pulsos de 30 segundos. Posteriormente, segmentos uninodales micropropagados se cultivaron en medio para tuberización, observándose una mayor producción en MS suplementado con 2.5 mg L-1 de BA y 8 % de sacarosa en las dos variedades. Los protocolos desarrollados en el presente estudio permitieron la obtención masiva de plántulas y la producción de microtubérculos de Diacol Capiro y Parda Pastusa; las plántulas y microtubérculos desarrollados pueden ser cultivados bajo condiciones controladas para la producción de semilla pre-básica.

Palabras clave

Diacol Capiro, microtuberización, Parda Pastusa, propagación, Solanum tuberosum

PDF

Biografía del autor/a

Eyda Johanna Araque Barrera

Bióloga, Estudiante de Maestría en Ciencias Biológicas UPTC. Boyacá Colombia.

María de los Angeles Bohórquez Quintero

Bióloga, Estudiante de Maestría en Ciencias Biológicas

José Estiben Pacheco Díaz

Biólogo, Estudiate de Mestría en Ciencias Biológicas UPTC

Lenny Yojana Correa Mora

Estudiante de Pregrado en Ciencias Biológicas UPTC

Citas

  1. M. Arellano, M. García, E. Villavicencio, y S. García, Producción de plántulas y semilla prebásica de variedades comerciales de papa libres de enfermedades, Folleto Técnico Núm. 41. 1a. ed. Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias, Centro de Investigación Regional Noreste, Campo Experimental Saltillo, Saltillo, México, 2010. ISBN: 978-607-425-301-6.
  2. T. Gavrilenko, O. Antonova, A. Shuvalova, E. Krylova, N. Alpatyeva, D. Spooner, and L. Novikova, “Genetic diversity and origin of cultivated potatoes based on plastid microsatellite polymorphism”, Genet. Resour. Crop Evol., vol. 60(7), pp. 1997-2015, 2013. DOI: https://doi.org/10.1007/s10722-013-9968-1
  3. M. Otálora, M. López, L. Mancilla. “Caracterización fisicoquímica, funcional, microbiológica, sensorial y de estabilidad de la harina de papa (Solanum tuberosum) para puré instantáneo”, Ciencia en Desarrollo, vol. 3(2), pp. 107-128, 2011.
  4. A. Diémé, M. Nahr, E. Codjo, and M. Ourèye, “Residual effects of sucrose and hormonal treatments of the tuberization medium on in vitro germination of potato (Solanum tuberosum L.) microtubers”. AJPS, vol. 4, pp. 1872-1878, 2013. DOI: https://doi.org/10.4236/ajps.2013.49230
  5. Agronet, “Área sembrada, área cosechada, producción y rendimiento del cultivo de papa en Colombia” [online], Ministerio de Agricultura de Colombia. 2016. Disponible en: http://www.agronet.gov.co/Documents/Papa.pdf#search=producci%C3%B3n%20de%20papa.
  6. D. Rodríguez, y L. Ramírez, “La agroindustria de la papa criolla en Colombia. Situación actual y retos para su desarrollo”, Gestión y Sociedad, vol. 4(2) pp. 17-30, 2011.
  7. C. Ruiz, D. Henao, M. Lozano, L. Colorado, H. Mora, J. Velandia et al. Plan Estratégico Departamental de Ciencia, Tecnología e Innovación de Boyacá. Boyacá 2022: La ciencia, la tecnología y la innovación al servicio del desarrollo regional. Primera edición. Departamento Administrativo de Ciencia, Tecnología e Innovación, Colciencias, Gobernación de Boyacá, Observatorio Colombiano de Ciencia y Tecnología - OCyT. Bogotá, Colombia. 2012. ISBN: 978-958-57775-1-4.
  8. J. Velásquez, Producción de tubérculo-semillas de papa en la estación experimental Santa Catalina del INIAP y su relación con el sector semillero nacional. Estación Experimental Santa Catalina, INIAP. Ecuador. pp. 1-8. 2014.
  9. P. Ranalli, F. Bassi, A. Ruaro, P. del Re, M. Di. Candilo, and A. Mandolino, “Microtuber and minituber production and field performance compared with normal tubers” Potato Research, vol. 37, pp. 383-391, 1994. DOI: https://doi.org/10.1007/BF02358352
  10. T. Murashige, F. Skoog, “A revised medium for rapid growth and bio-assays with Tobacco tissue cultures”, Physiol. Plant, vol. 15(3), pp. 473-497, 1962. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
  11. R. Rishi, L. Diengdoh, A. Srivastava, and T. Bag, “Efficiency of different nodal segments for potato micro-propagation”, Environment and Ecology, vol. 30(3), pp. 594-597, 2012.
  12. J. Mejía, S. González, R. Mora, y J. Rodríguez, “Propagación in vitro de papa ratona (Oxalis tuberosa Mol.)”, Revista Chapingo Serie Horticultura, vol. 12(2), pp. 231-237, 2006. DOI: https://doi.org/10.5154/r.rchsh.2005.06.029
  13. K. Pruski, “In vitro multiplication through nodal cuttings”, Potato Research, vol. 50, pp. 293-296, 2008. DOI: https://doi.org/10.1007/s11540-008-9050-0
  14. Danci, O. “Studies regarding the elaboration of an optimum micro-propagation protocol for potato cultivar recalcitrant to in vitro cultures”, RJAS, vol. 39(2), pp. 577-580, 2007.
  15. S. Millam, “Development in transgenic biology and the genetic engineering of useful traits”, in Potato biology and biotechnology, D. Vreugdenhil, D. Elsevier, Amsterdam, Netherlands, 2007, pp. 669-686. DOI: https://doi.org/10.1016/B978-044451018-1/50072-5
  16. R. Rai, L. Diengdoh, A. Srivastava, and T. Bag, “Efficiency of different nodal segments for potato micropropagation”, Environment and Ecology, vol. 30(3), pp. 594-597, 2012.
  17. A. Srivastava, L. Diengdoh, R. Rai, T. Bag, and B. Singh “In vitro micropropagation and micro-tuberization potential of selected potato varieties”, Indian Journal of Hill Farming, vol. 25(2), pp. 14-17, 2012.
  18. J. Cotes, y C. Ñústez, "Evaluación de dos tipos de esquejes en la producción de semilla prebásica de papa criolla (Solanum phureja Juz et. Buk) Variedad "Yema de Huevo”. Agronomía Colombiana, vol. 18(1-2), pp. 7-13, 2001.
  19. A. Aslam, A. Ali, N. Huma, A. Saleem and J. Iqbal, “Effect of interaction of 6-benzyl aminopurine (BA) and sucrose for efficient microtuberization of two elite potato (Solanum tuberosum L.) cultivars, Desiree and Cardinal”, AJB, vol. 10(59), pp. 12738-12744, 2011.
  20. J. Lugo, N. Mogollón, Z. Rodríguez, y J. Díaz “Efecto del intercambio gaseoso sobre el crecimiento y tuberización de vitroplantas de papa”, Rev. Fac. Agron. (LUZ), vol. 26, pp. 325-339, 2009.
  21. I. Hussain, Z. Chaudhry, A. Muhammad, R. Asghar, S. Saqlan, and H. Rashid, “Effect chlorocholine chloride, sucrose and bap on in vitro tuberization in potato (Solanum tuberosum L. cv. Cardinal)”, Pakistan J. Bot., vol. 38(2), pp. 275-282, 2006.
  22. N. Azzopardi, Micropropagation of Solanum tuberosum varieties (Alpha and Desiree) for the production of seed tubers, Institute of Agriculture, University of Malta, Malta, República de Malta, 1997.
  23. N. Mon Montoya, D. Castro, J. Díaz, y D. Ríos, “Tuberización in vitro de papa (Solanum tuberosum L), variedad Diacol Capiro, en biorreactores de inmersión temporal y evaluación de su comportamiento en campo”, Ciencia, vol. 16(3), pp. 288-295, 2008.
  24. A. Aslam, and J. Iqbal, “Combined effect of cytokinin and sucrose on in vitro tuberization parameters of two cultivars i.e., diamant and red norland of potato (Solanum tuberosum)”, Pak. J. Bot., vol. 42(2), pp. 1093-1102, 2010.
  25. A. Aslam, A. Ali, N. Huma, A. Saleem, and J. Iqbal “Effect of interaction of 6-benzyl aminopurine (BA) and sucrose for efficient microtuberization of two elite potato (Solanum tuberosum L.) cultivars, Desiree and Cardinal”, AJB, vol. 10(59), pp. 12738-12744, 2011. DOI: https://doi.org/10.5897/AJB11.2005
  26. D. Donnelly, W. Coleman, and S. Coleman, “Potato microtuber production and performance”, AJPR, vol. 80, pp. 103-115, 2003. DOI: https://doi.org/10.1007/BF02870209
  27. M. Hoque, “In vitro tuberization in potato (Solanum tuberosum L.)”, Plants Omics, vol. 3(1), pp. 7-11, 2010.
  28. J. Morales, Transformación genética de plantas de papa (Solanum tuberosum L.) con el gen que codifica para el inhibidor de cisteín proteinasas de origen humano; cistatina C. Universidad de Colima, Facultad de Ciencias Biológicas y Agropecuarias, Colima, Estado de Colima, México, 2006.
  29. C. Fuentes, J. Rivera, C Sánchez, A. Cruz, R. Gutiérrez, y A. Valdez, “Producción in vitro de microtubérculos de papa cv. Alpha”, Facultad de Ciencias Químico-Biológicas, Universidad Autónoma de Sinaloa, México. 2012. Disponible en: http://www.conpapa.org.mx/files/congress/2012/technical_scientific/produccion_in_vitro_microtuberculos_papa_cv_alpha.pdf.
  30. N. Coria, A. Pérez, J. Sarquís, I. Cantú, H. González, y M. Gómez, “Regeneración de la planta de papa (Solanum tuberosum L.) In vitro a partir del estolón”, Ciencia UANL, vol. 7(3), pp. 361-370, 2004.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.