Antagonismo in vitro de Trichoderma spp. sobre aislamientos de Sclerotinia spp. y Rhizoctonia spp.

Authors

  • Lilliana Hoyos-Carvajal
  • Gloria Duque
  • Sergio Orduz P.

DOI:

https://doi.org/10.17584/rcch.2008v2i1.1175

Abstract

El género Trichoderma consta de diversas especies de hongos que tienen la capacidad de parasitar a otros hongos que causan enfermedades en plantas. En el presente estudio, el objetivo fue evaluar la actividad micoparasítica in vitro de 73 aislamientos de Trichoderma spp. sobre tres aislamientos del fitopatógeno Sclerotinia spp. provenientes de habichuela, repollo y pimentón y dos aislamientos de Rhizoctonia provenientes de arroz y de fríjol, se cuantificó evaluando el porcentaje de inhibición del crecimiento micelial o antagonismo siguiendo la metodología de cultivos duales y la calificación de micoparasitismo planteados por Royse y Ries (1978). Para
analizar los datos obtenidos en los ensayos, se llevó a cabo la prueba de Kruskall-Wallis, detectando diferencias estadísticas significativas en el grado de parasitismo de aislamientos de Trichoderma spp. sobre los hongos fitopatógenos evaluados. Los aislamientos de Trichoderma con alto grado de micoparasitismo fueron aquellos capaces de combatir a los fitopatógenos en cuatro de las cinco pruebas realizadas, entre los cuales sobresalen T. asperellum T51 y T. harzianum T53. El aislamiento T. harzianum T21demostró tener un grado de antagonismo muy bajo en todas las pruebas realizadas.

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References

Agrios, G. 2005. Fitopatología. 2a ed. Editorial Limusa, México D.F.

Barnett, H.L. y B.B. Hunter. 1998. Illustred genera of imperfect fungi. 4th ed. American Phytopathological Society, New York, NY.

Benítez, T.; A.M. Rincón; M.C. Limón y A.C. Codón. 2004. Biocontrol mechanisms of Trichoderma strains. Intl. Microbiol. 7(4), 249-260.

Castro, B.L. 1995. Antagonismo de algunos aislamientos de Trichoderma koningii, originados en suelo colombiano contra Rosellinia bunodes, Sclerotinia sclerotium y Pythium ultimum. Fitopatol. Colomb. 19(2), 7-18.

Chincholkar, S. y K.J. Mukerji. 2007. Biological control of plant diseases. Haworth Press, New York, NY.

Cundom, M.A.; S.M. Mazza de Gaiad; M.A. Mazzati de Castañon; S.A. Gutiérrez de Arriola y M. Coutinho. 2002. Actividad antagónica in vitro de Hongos saprófitos sobre Sclerotinia sclerotiorum. En: http://www.unne.edu.ar/cyt/agrarias/a-037.pdf; consulta: abril de 2008.

Elad, Y.; I. Chet y J. Katan. 1980.Trichoderma harzianum: a biocontrol agent effective against Sclerotinia rolfsii and Rhizoctonia solani. Phytopathol. 70(2), 119-121.

Elad, Y.; I.Chet; P. Boyle y Y. Henis. 1983. Parasitismo of Trichoderma spp. on Rhizoctonia solani and Sclerotium rolfsii scanning electron mycroscopy and fluorescence microscopy. Phytopathol. 73, 85-88.

Fravel, D.R. 2005. Commercialization and implementation of biocontrol. Annu. Rev. Phytopathol. 43(2), 337-359.

Garveba, P.; J.A. van Veen y J.D. van Elsas. 2004. Microbial diversity in soil: Selección of microbial populations by plant and soil type and implications for disease suppressiveness. Annu. Rev. Phytopathol. 42(2), 243-270.

Gilligan, C.A.; S.A. Simons y H.A. Hide. 1996. Inoculum density and spacial pattern of Rhizoctonia solani in field crops of Solanum tuberosum: effects of cropping frequency. Plant Pathol. 45(2), 232-244.

Harman, G. 2000. Myth and dogmas of biocontrol changes in perceptions derived from research on Trichoderma harzianum T22. Plant. Dis. 84(4), 377-393.

Hjeljord, L. y A. Tronsmo. 1998. Trichoderma and Gliocladium in biological control: an overview. pp. 131-151. En: Harman, G.E. y C.P. Kubicek (eds.). Trichoderma and Gliocladium. Vol. 2. Enzymes, biological control and commercial applications. Taylor & Francis, London.

Hoyos-Carvajal, L.; P. Chaparro; M. Abramsky; I. Chet y S. Orduz. 2008. Evaluación de aislamientos de Trichoderma spp. contra Rhizoctonia solani y Sclerotium rolfsii bajo condiciones in vitro y de invernadero. Agron. Colomb. 26(3), 451-458.

Howell, C.R. 2006. Understanding the mechanisms employed by Trichoderma virens to effect biological control of cotton diseases. Phytopathol. 96(2), 178-180.

Kraus, G.F.; I. Druzhinina; W. Gams; J. Bissett; D. Zafari; G. Szakacs; A. Koptchinski; H. Prillinger; R. Zare y C.P. Kubiek. 2004. Trichoderma brevicompactum sp. nov. Mycol. 96(5), 1059-1073.

Nico, A.I.; C.I. Mónaco; G. Dal Bello y H. Alippi. 2005. Efecto de la adición de enmiendas orgánicas al suelo sobre la capacidad patogénica de Rhizoctonia solani: ii. Micoflora asociada y antagonismo in vitro de los aislados más frecuentes. Rev. Inv. Agrop. 34(1), 29-44.

Royse, D.J. y S.M. Ries. 1978. The influence of fungi isolated from peach twigs on the pathogenicity of Cytospora cincta. Phytopathol. 68, 603-607.

Samuels, G.J. 2006. Trichoderma: Systematics, the sexual state, and ecology. Phytopathol. 96(2), 195-206.

Schwartz, H.F. y M. Pastor-Corrales. 1988. El moho blanco del frijol y su control. Guía de estudio. Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT), Cali, Colombia.

Strange, R.N. y P.R. Scott. 2005. Plant disease: A threat to global food security. Annu. Rev. Phytopathol. 43(2), 83-116.

Ulloa, M. y R.T. Hanlin. 2000. Illustrated dictionary of mycology. APS Press, St. Paul, MI.

Published

2011-02-01

How to Cite

Hoyos-Carvajal, L., Duque, G., & Orduz P., S. (2011). Antagonismo in vitro de Trichoderma spp. sobre aislamientos de Sclerotinia spp. y Rhizoctonia spp. Revista Colombiana De Ciencias Hortícolas, 2(1), 76–86. https://doi.org/10.17584/rcch.2008v2i1.1175

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Vegetable section

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