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Regeneración in vitro de plántulas de tomate de árbol (Solanum betaceum Cav. Sendt.)

Abstract

El tomate de árbol es un frutal de importancia en Colombia, con una productividad limitada por la presencia de problemas sanitarios que se transmiten a través de los métodos tradicionales de propagación, que obligan a buscar métodos más eficientes para la obtención de plantas sanas.  Este trabajo  pretendió evaluar diferentes alternativas de micropropagación para determinar la opción más eficiente de multiplicación masiva de plántulas de tomate de árbol (Solanum. betaceum); se evaluaron tres auxinas, ácido indolacético (AIA), ácido naftalenacético (ANA) y ácido 2,4-diclorofenoxiacético (2,4-D) en diferentes dosis, combinadas con 6-bencilaminopurina (BAP) (1,0 mg L-1 y 3,0 mg L-1), en un medio de cultivo Murashige Skoog (1962), utilizando hipocotilos como explantes. El mayor promedio de brotes por explante (11,6 brotes) se obtuvo con  AIA 0,5 mg L-1 + BAP 3,0 mg L-1; el porcentaje de enraizamiento del explante fue mayor en el testigo sin fitorreguladores y con la inclusión de AIA. La variable  formación de plantas completas tuvo mejor comportamiento con AIA 0,5 mg L-1 con el 36,9%. El mejor porcentaje de enraizamiento de brotes obtenidos a partir de hipocotilos, se obtuvo con  AIA 1,0 mg L-1 + BAP 3,0 mg L-1, con un porcentaje de 96,23% y con AIA 1 mg L-1 + BAP 1,5 mgL-1 con 88,83% respectivamente. Las plantas enraizadas fueron exitosamente trasferidas a campo con un 96,6% de  supervivencia para hipocotilos.

Keywords

bencilaminopurina, ácido indolacético, ácido naftalenacético, ácido 2, 4-diclorofenoxiacético, micropropagación, hipocotilos

PDF (Español)

References

  • Apraez, J., J. Romo y T. Lagos. 2012. Regeneracion de plantas de tomate de árbol (Cyphomandra betacea. Cav Sendt.) mediante organogénesis inducida a partir de callos. Rev. Cienc. Agric. 29(2), 108-115.
  • Aremu, A., L. Placková, M. Bairu, O. Novák, L. Szücová, K. Dolezal, J. Finnie y J. Staden. 2014. Endogenous cytokinin profiles of tissue-cultured and acclimatized ‘Williams’ bananas subjected to different aromatic cytokinin treatments. Plant Sci. 214, 88-98. Doi: 10.1016/j.plantsci.2013.09.012
  • Ashrafuzzaman, M., M. Hossain, M. Razi y S. Shahidul. 2009. Regeneration potential of seedling explants of chilli (Capsicum annuum). Afr. J. Biotechnol. 18(1), 591-596.
  • Bonnet, J.G. y J.F. Cárdenas. 2012. Tomate de árbol (Cyphomandra betacea Sendt.). pp. 825-850. En: Fischer, G. (ed.). Manual para el cultivo de frutales en el trópico. Produmedios, Bogotá.
  • Cadena, E. 2006. Estudio de prefactibilidad para el tomate de árbol. Technical report. SICA, Ministerio de Agricultura y Ganadería del Ecuador, Quito.
  • Calva, G. y J. Pérez. 2005. Cultivo de células y tejidos vegetales. Rev. Digital Univ. 6(11), 1-16.
  • Castro, J. y D. Florez. 2007. Establecimiento in vitro y pruebas preliminares de micropropagación en medio semisólido y líquido de frambuesa (Rubus idaeus L.). Tecnol. Marcha. 20(3), 46-54
  • Contreras, I. y J. Almeida. 2003. Micropropagación del Tomate de Árbol (Cyphomandra betacea (Cav.) Sendtn.), Solanaceae silvestre usada en la alimentación humana. Rev. For. 47(2), 9-13.
  • Chacón, R., D. Mora, L. Marchena, A. Schmidt y C. Ulloa. 2013. Cultivo in vitro del tomate de árbol (Cyphomandra betacea (Cav.) Sendt. (Fenotipo naranja) proveniente de Costa Rica. Rev. VI Encuentro Investig. 6(4), 45-55.
  • Contreras, I. y J. Almeida. 2003. Micropropagación del tomate de árbol (Cyphomandra betacea (Cav.) Sendtn.), Solanaceae silvestre usada en la alimentación humana. Rev. For. Venez. 47(2), 9-13.
  • Correia, S. y J. Canhoto. 2012. Biotechnology of tamarillo (Cyphomandra betacea): From in vitro cloning to genetic transformation. Sci. Hortic. 148, 161-168. Doi: 10.1016/j.scienta.2012.09.037
  • Elias, H., R. Taha, N. Hasbullah, N. Mohamed, A. Manan, N. Mahmad y S. Mohajer. 2015. The effects of plant growth regulators on shoot formation, regeneration and coloured callus production in Echinocereus cinerascens in vitro. Plant Cell Tiss. Organ. Cult. 120, 729-739. Doi: 10.1007/s11240-014-0642-x
  • Espinosa, J., O. Trillos, L. Afanador y G. Correa. 2005. Potencial de propagación in vitro de tomate de árbol partenocarpico (Cyphomandra betacea Cav ). Rev. Fac. Nal. Agr. Medellín 58(2), 2685-2695.
  • Ferl, R. y A. Paul. 2000. Genome organization and expression. pp. 312-357. En: Buchanan B., W. Gruissem y R. Jones. (eds.). Biochemistry and molecular biology of plants. American Society of Plant Physiologists, Rockville, MD.
  • Flores, D., R. Chacón, V. Jiménez y F. Ortiz. 2012. Enraizamiento de mora (Rubus adenotrichus) en medio líquido en el sistema de inmersión temporal y su aclimatación en invernadero. Tecnol. Marcha 4(25), 3-9. Doi: 10.18845/tm.v25i2.300
  • Gonzales, S. 2003. Medios de cultivo. Departamento de Biología Vegetal, Facultad de Biología, Universidad de la Habana, La Habana.
  • Guimarães, M., M. Tomé y G. Cruz. 1996. Cyphomandra betacea (Cav.) Sendt. (tamarillo). Biotecnol. Agr. For. 35(4), 120-137.
  • Hoyos, J., C. Perea y R. Velasco. 2008. Evaluación del efecto de diferentes concentraciones de fitohormonas. en la micropropagación del plátano Dominico Hartón (Musa AAB Simmonds). Fac. Cienc. Agropec. 6(2), 99-104
  • Hu, G., Y. Dong, Z. Zhang, X. Fan, F. Ren y J. Zhou. 2015. Virus elimination from in vitro apple by thermotherapy combined with chemotherapy. Plant Cell Tiss Organ Cult. 121, 435-443. Doi: 10.1007/s11240-015-0714-6
  • Kaparakis, G. y P. Alderson. 2002. Influence of high concentrations of cytokinins on the production of somatic embryos by germinating seeds of tomato, aubergine and pepper. J. Hort. Sci. Biotechnol. 77, 186-190. Doi: 0.1080/14620316.2002.11511477
  • Kothari, S., A. Joshi, S. Kachhwaha y N. Ochoa. 2010. Chilli peppers. A review on tissue culture and transgenesis. Biotechnol. Adv. 28, 35-48. Doi: 10.1016/j.biotechadv.2009.08.005
  • Kurshid, A., A. Singh, S. Jaadep y S. Satbir. 2008 Genotype, explant and culture medium effects on somatic embryogenesis in eggplant (Solanum melogena L). Genet. Biotechnol. 49(3), 182-187.
  • Lasso, M. 2007. Propuesta para la creación de una cooperativa comercializadora de productos derivados del Tomate de Árbol orgánicos en el municipio de Funes de Nariño, Colombia. Trabajo de grado. Universidad de Nariño, Pasto, Colombia.
  • Lee, T. 1974. Cytokinin control in subcellular localization of indoleacetic acid oxidase and peroxidase. Phytochem. 13, 2445-2453. Doi: 10.1016/S0031-9422(00)86919-8
  • Litz, R.E. y R.L. Jarret. 1993. Regeneración de plantas en el cultivo de tejidos: Embriogénesis somática y organogénesis. pp. 143-172. En: Roca, W.M. y L.A. Mroginski (eds.). Cultivo de tejidos en la agricultura: Fundamentos y aplicaciones. Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT), Cali, Colombia.
  • Martínez, S., R. Gómez, L. Posada, R. Barbón, M. Acosta, M. Reyes, M. Pérez, D. Torres, M. Pons, M. Cárdenas, A. Aguilera y M. Tejeda. 2012. Efecto de dos citoquininas, ácido ascórbico y sacarosa en la obtención de plantas in vitro de Sorghum bicolor para la formación de callos. Rev. Colomb. Biotecnol. 14(2), 101-110.
  • Moshkov, I., G. Novikova, M. Hall y E. George. 2008. Plant growth regulators III: gibberellins, ethylene, abscisic acid, their analogues and inhibitors. pp. 227-282. En: George, E., M.A. Hall y G. De Klerk (eds). Plant propagation by tissue culture. 3rd ed. Springer, Dordrecht, The Netherlands.
  • Murashige, T. y F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Plant Physiol. 15, 473-497. Doi: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
  • Obando, M. y M. Jordan. 2001. Regenerative responses of Cyphomandra betacea (Cav.) Sendt. (Tamarillo) cultivated in vitro. Acta Hortic. 560, 429-432. Doi: 10.17660/ActaHortic.2001.560.83
  • Pedroza-Manrique, J. 2009. Efecto del carbón activado, ácido indolacético (AIA) y bencil amino purina (BAP) en el desarrollo de protocormos de Epidendrum elongatum Jacq bajo condiciones in vitro. Rev. Colomb. Biotecnol. 11(1), 17-32
  • Pringle, G. y B. Murray. 1991 Interspecific hybridization involving the tamarillo, Cyphomandra betacea (Cav.) Sendt. (Solanacea). New Zeal. J. Crop Hort. Sci. 19, 103-111. Doi: 10.1080/01140671.1991.10421787
  • Quintero, I., J. Polo, A. Jarma y A. Espitia. 2003. Enraizamiento in vitro de Dioscoreas sp. Rev. Colomb. Biotecnol. 5(2), 51-56.
  • Rathore, M., S. Yadav, P. Yadav, J. Kheni y B. Jha. 2015. Micropropagation of elite genotype of Jatropha curcas L. through enhanced axillary bud proliferation and ex vitro rooting. Biomass Bioenergy 83, 501-510. Doi: 10.1016/j.biombioe.2015.10.023
  • Rout, G. y S. Mohapatra. 2006. Tissue culture of ornamental pot plant: A critical review on present scenario and future prospects. Biotechnol. Adv. 24, 531-560. Doi: 10.1016/j.biotechadv.2006.05.001
  • Smith, R. 2000. Plant tissue culture. 3rd ed. Academic Press, New York, NY.
  • Tafur, R. 2006. Propuesta frutícola para Colombia y su impacto en la actividad económica, nacional, regional y departamental. p. 47-66. En: Memorias Primer Congreso Colombiano de Horticultura, Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas, Bogotá.
  • Twyman, R., E. Stoger, S. Schillberg, P. Christou y R. Fischer. 2003. Molecular farming in plants: host systems and expression technology. Trends Biotechnol. 21(12), 570-578. Doi: 10.1016/j.tibtech.2003.10.002
  • Uribe, M., J. Ulloa, C. Delaveau, K. Sáez, F. Muñoz y P. Cartes. 2012. Influencia de las auxinas sobre el enraizamiento in vitro de microtallos de Nothofagus glauca (Phil.) Krasser. Gayana Bot. 69(1), 105-112. Doi: 10.4067/S0717-66432012000100010

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