Impacto del fósforo y luminosidad en la propagación, reacciones fotoquímicas y calidad de plántulas de Lippia alba (Mill.) N.E.Br.
Resumen
Lippia alba (Mill.) N.E.Br. (hierba de limón) es una especie de interés medicinal y aromática, con estudios incipientes en relación a la nutrición mineral y a la luminosidad en las respuestas foliares y vegetativas. El objetivo del trabajo fue evaluar los aspectos foliares y la producción de plántulas de L. alba bajo dos condiciones de luminosidad (pleno sol y 50% de sombreamiento) y cuatro niveles de fósforo (0, 150, 300 y 450 mg kg-1). Las plántulas presentaron alteraciones en los índices fisiológicos y respuestas fotoquímicas basadas en la fluorescencia de la clorofila-a. La fertilización fosfatada contribuyó en la mitigación del estrés luminoso en la síntesis de clorofilas. La mayor producción de biomasa de las hojas ocurrió con la adición de P. El análisis de componentes principales explicó el 74% de la variabilidad donde fueron características representativas el número de hojas, la fluorescencia inicial y el área foliar específica dentro del componente principal 1 (PC 1) y el número de brotes, supervivencia y el área foliar en el PC 2. En el análisis de conglomerados, se constató la formación de dos grupos, con distancias más bajas entre 300 pleno sol y 450 sombreamiento (2.31). Las plántulas cultivadas a pleno sol presentaron mayor capacidad de supervivencia y calidad. La producción de plántulas de L. alba debe ser realizada bajo pleno sol con adición de 450 mg kg-1 del fósforo.
Palabras clave
Aclimatización, Fluorescencia de la clorofila-a, Planta medicinal, Nutrición mineral
Citas
Alvares, C.A., J.L. Stape, P.C. Sentelhas, J.L. de Moraes Gonçalves, and J.L. Sparovek. 2013. Köppen’s climate classification map for Brazil. Meteorol. Z. 22(6), 711-728. Doi: 10.1127/0941-2948/2013/0507
Andrade, F.H.A., W.E. Pereira, R.R. Morais, A.F. Silva, and M.A. Barbosa Neto. 2018. Effect of phosphorus application on substrate and use of saline water in sugar-apple seedlings. Pesqui. Agropecu. Trop. 48(2), 190-199. Doi: 10.1590/1983-40632018v4852035
Araújo, E.C., M.A. Uribe-Opazo, and J.A. Johann. 2013. Análise de agrupamento da variabilidade espacial da produtividade da soja e variáveis agrometeorológicas na região oeste do Paraná. Eng. Agríc. 33(4), 782-795. Doi: 10.1590/S0100-69162013000400018
Arnon, D.I. 1949. Copper enzymes in isolated chloroplasts: polyphenoloxidase in Beta vulgaris. Plant Physiol. 24(1), 1-15. Doi: 10.1104/pp.24.1.1
Baker, B. 2008. Chlorophyll fluorescence: a probe of photosynthesis in vivo. Ann. Rev. Plant Biol. 59, 8-113. Doi: 10.1146/annurev.arplant.59.032607.092759
Benincasa, M.M.P. 2003. Análise do crescimento de plantas (noções básicas). FUNEP, Jaboticabal, Brazil.
Blind, M.R., K.C.P. Costa, C.E.M. Silva, P.T.B. Sampaio, and J.F.C. Gonçalves. 2018. Fotossíntese de espécies Anibae em resposta à exposição a ambientes contrastantes de luz. Rodriguésia 69(2), 397-407. Doi: 10.1590/2175-7860201869211
Carlos, L., N. Venturin, R.P. Venturin, J.M. Alves, and P.R. Silva. 2018. Liming and phosphating in Dalbergia nigra (Vell.) Allemão ex Benth. seedlings. Floresta Ambient. 25(4), e20170239. Doi: 10.1590/2179-8087.023917
Carstensen, A., A. Herdean, S.B. Schmidt, A. Sharma, C. Spetea, M. Pribil, and S. Husted. 2018. The impacts of phosphorus deficiency on the photosynthetic electron transport chain. Plant Physiol. 3, 1-38. Doi: 10.1104/pp.17.01624
Dickson, A., A.L. Leaf, and J.F. Hosner. 1960. Quality appraisal of white spruce and white pine seedling stock in nurseries. Forest. Chron. 36(1), 10-13. Doi: 10.5558/tfc36010-1
Díez, M.C., F. Moreno, and E. Gantiva. 2017. Effects of light intensity on the morphology and CAM photosynthesis of Vanilla planifolia Andrews. Rev. Fac. Nac. Agron. Medellín 70(1), 8023-8033. Doi: 10.15446/rfna.v70n1.61736
Farias, M.E., E.G. Martinazzo, and M.A. Bacarin. 2016. Chlorophyll fluorescence in the evaluation of photosynthetic electron transport chain inhibitors in the pea. Rev. Ciênc. Agron. 47(1), 178-186. Doi: 10.5935/1806-6690.20160021
Fu, W., P. Li, and Y. Wu. 2012. Effects of different light intensities on chlorophyll fluorescence characteristics and yield in lettuce. Sci. Hortic. 135, 45-51. Doi: 10.1016/j.scienta.2011.12.004
Gérard, F. 2016. Clay minerals, iron/aluminum oxides, and their contribution to phosphate sorption in soils - a myth revisited. Geoderma 262, 213-226. Doi: 10.1016/j.geoderma.2015.08.036
Glamočlija, J., M. Soković, V. Tešević, G.A. Linde, and N.B. Colauto. 2011. Chemical characterization of Lippia alba essential oil: an alternative to control green molds. Braz. J. Microbiol. 42(4), 1537-1546. Doi: 10.1590/S1517-83822011000400041
Gommers, C.M.M., E.J.W. Visser, K.R.S Onge, L.A.C.J. Voesenek, and R. Pierik. 2013. Shade tolerance: when growing tall is not an option. Trends Plant Sci. 18(2), 65-71. Doi: 10.1016/j.tplants.2012.09.008
Gondim, A.R.O., M. Puiatti, F.L. Finger, and P.R. Cecon. 2018. Artificial shading promotes growth of taro plants. Pesqui. Agropecu. Trop. 48(2), 83-89. Doi: 10.1590/1983-40632018v4851355
Guzmán, J.A., R.A. Cordeiro, and E. Corea. 2016. Biomass allocation and gas exchange are affected by light conditions in endangered Cedrela salvadorensis (Meliaceae) seedlings. Rev. Biol. Trop. 64(3), 1143-1154. Doi: 10.15517/rbt.v64i3.19606
Hawkesford, M., W. Horst, T. Kichey, H. Lambers, J. Schjoerring, I.S. Møller, and P. White. 2012. Functions of macronutrients. pp. 135-189. In: Marschner, P. (ed.). Marschner’s mineral nutrition of higher plants. 3rd ed. Elsevier; Academic Press, Amsterdam. Doi: 10.1016/B978-0-12-384905-2.00006-6
Hohlenwerger, J.C., B. Baldisserotto, R.D. Couto, B.M. Heinzmann, D.T. Silva, B.O. Caron, D. Schmidt, and C.E. Copatti. 2017. Essential oil of Lippia alba in the transport of Nile tilapia. Cienc. Rural. 47(3), e20160040. Doi: 10.1590/0103-8478cr20160040
Islas-Espinoza, M., L. Solís-Mejía, and M.V. Esteller. 2014. Phosphorus release kinetics in a soil amended with biosolids and vermicomposto. Environ. Earth Sci. 71(3), 1441-1451. Doi: 10.1007/s12665-013-2549-y
Jaimez, R.E., F.P. Amores, A. Vasco, R.G. Loor, O. Tarqui, G. Quijano, J.C. Jimenez, and W. Teraza. 2018. Photosynthetic response to low and high light of cacao growing without shade in an area of low evaporative demand. Acta Biol. Colomb. 23(1), 95-103. Doi: 10.15446/abc.v23n1.64962
Jiménez-Suancha, S.C., O.H. Alvarado, and H.E. Balaguera-López. 2015. Fluorescencia como indicador de estrés en Helianthus annuus L. Una revisión. Rev. Colomb. Cienc. Hortíc. 9(1), 149-160. Doi: 10.17584/rcch.2015v9i1.3753
Kuwahara, F.A., G.M. Souza, K.A. Guidorizi, C. Costa, and P.R.L. Meirelles. 2016. Phosphorus as a mitigador o the effects of water stress on the growth and photosynthetic capacity of tropical C4 grasses. Acta Sci. Agro. 38(3), 363-370. Doi: 10.4025/actasciagron.v38i3.28454
Leal, C.C.P., S.B. Torres, R.M.O. Freitas, N.W. Nogueira, and R.M. Farias. 2015. Light intensity and type of container on producing Cassia grandis L. f. seedlings. Rev. Bras. Eng. Agríc. Ambient. 19(10), 939-945. Doi: 10.1590/1807-1929/agriambi.v19n10p939-945
Lichtenthaler, H.K. and C. Buschmann. 2001. Chlorophylls and carotenoids: measurement and characterization by UV-VIS spectroscopy. Curr. Protoc. Food Anal. Chem. 1(Supl. 1). F4.3.1-F4.3.8. Doi: 10.1002/0471142913.faf0403s01
Liu, Y., W. Dawson, D. Prati, E. Haeuser, Y. Feng, and M. Kleunen. 2016. Does greater specific leaf area plasticity help plants to maintain a high performance when shaded? Ann. Bot. 118(7), 1329-1336. Doi: 10.1093/aob/mcw180
Machado, T.F., M.F. Borges, and L.M. Bruno. 2011. Aplicação de antimicrobianos naturais na conservação de alimentos. Empresa Agroindústria Tropical, Fortaleza, Brazil.
Monteiro, D.R., H.F. Melo, C.M.T. Lins, P.R.M. Dourado, H.R.B. Santos, and E.R. Souza. 2018. Chlorophyll a fluorescence in saccharine Sorghum irrigated with saline water. Rev. Bras. Eng. Agríc. Ambient. 22(10), 673-678. Doi: 10.1590/1807-1929/agriambi.v22n10p673-678
Oliveira, V.C., A.R. Santos, G.S. Souza, and R.M. Santos. 2017. Respostas fisiológicas de plantas de orégano (Origanum vulgare L.) cultivadas sob malhas coloridas e fertilizantes orgânicos. Rev. Colomb. Cienc. Hortic. 11(2), 400-407. Doi: 10.17584/rcch.2017v11i2.7591
Oliveira, G.C., W.L. Vieira, S.C. Bertolli, and A.C. Pacheco. 2016. Photosynthetic behavior, growth and essential oil production of Melissa officinalis L. cultivated under colored shade net. Chilean J. Agric. Res. 76(1), 123-128. Doi: 10.4067/S0718-58392016000100017
Quesada, C.A., J. Lloyd, L.O. Anderson, N.M. Fyllas, M. Schwarz, and C.I. Czimczik. 2011. Soils of Amazonia with particular reference to the RAINFOR sites. Biogeosciences 8(6), 11415-11440. Doi: 10.5194/bg-8-1415-2011
Ribeiro, A.S.R., M.S. Ribeiro, S.K.V. Bertolucci, W.J.M. Bittencourt, A.A. Carvalho, W.N. Tostes, E. Alves, and J.E.B.P. Pinto. 2018. Colored shade nets induced changes in growth, anatomy and essential oil of Pogostemon cablin. An. Acad. Bras. Ciênc. 90(2), 1823-1835. Doi: 10.1590/0001-3765201820170299
Santos, H.G., P.K.T. Jacomine, L.H.C. Anjos, V.A. Oliveira, J.F. Lumbreras, M.R. Coelho, J.A. Almeida, J.C. Araújo Filho, J.B. Oliveira, and T.J.F. Cunha. 2018. Sistema brasileiro de classificação de solos. 5th ed. Embrapa Solos, Rio de Janeiro, Brazil.
Sarto, M.V.M., D. Bessegio, C.A. Rosolem, and J.R.W. Sarto. 2018. Safflower root and shoot growth affected by soil compaction. Bragantia 77(2), 348-355. Doi: 10.1590/1678-4499.2017191
Silva, D.F., R. Pio, J.D.R. Soares, P.V. Nogueira, P.M. Peche, and F. Villa. 2016. The production of Physalis spp. seedlings grown under different-colored shade nets. Acta Sci. Agron. 38(2), 257-263. Doi: 10.4025/actasciagron.v38i2.27893
Soares, J.D.R., G.M.G. Dias, R.A.L. Silva, M. Pasqual, C.R.G. Labory, S.A. Asmar, and J.D. Ramos. 2017. Photosynthetic pigments content and chloroplast characteristics of tamarind leaves in response to different colored shading nets. Aust. J. Crop. Sci. 11(3), 296-299. Doi: 10.21475/ajcs.17.11.03.p7906
Souza, J.P., N.M.J. Melo, A.D. Halfeld, and J.N. Reis. 2017. Shading effects on leaf life span and functional traits in the widespread species Enterolobium contorlisiliquum (Vell.) Morong. Acta Sci. Biol. Sci. 39(1), 113-122. Doi: 10.4025/actascibiolsci.v39i1.33400
Souza, N.H., M.E. Marchetti, T.O. Carnevali, D.D. Ramos, S.P.Q. Scalon, and E.F. Silva. 2013. Estudo nutricional de canafístula (I): crescimento e qualidade de mudas em resposta a adubação com nitrogênio e fósforo. Rev. Árvore. 37(4), 717-724. Doi: 10.1590/S0100-67622013000400015
Taiz, L., E. Zeiger, I. Møller, and A. Murphy. 2017. Fisiologia e desenvolvimento vegetal. 6th ed. Artmed, Porto Alegre, Brazil.
Xing, D. and Y. Wu. 2014. Effect of phosphorus deficiency on photosynthetic inorganic carbon assimilation of three climber plant species. Bot. Stud. 55, 60. Doi: 10.1186/s40529-014-0060-8