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Vol. 15 Núm. 1 (2018)

ARTICULOS

Efecto in vitro de los extractos hidroalcohólico y etanólico de semilla de papaya (Carica papaya) en Haemonchus contortus

https://doi.org/10.19053/01228420.v15.n1.2018.7756

Publicado 2018-02-01

  • María de los Ángeles Marroquín-Tun
    • ,
  • Rosa Isabel Higuera-Piedrahita
    • ,
  • María Eugenia López-Arellano
    • ,
  • Raquel López-Arellano
    • ,
  • Héctor Alejandro de la Cruz-Cruz
    • ,
  • Rocío Silva-Mendoza
    • ,
  • Jorge Alfredo Cuéllar-Ordaz

María de los Ángeles Marroquín-Tun
Universidad Nacional Autónoma de México (Cuautitlán Izcalli, México)

Rosa Isabel Higuera-Piedrahita
Universidad Nacional Autónoma de México (Cuautitlán Izcalli, México)

María Eugenia López-Arellano
Centro Nacional de Investigación Disciplinaria en Parasitología Veterinaria (Cuernavaca, Morelos, México)

Raquel López-Arellano
Universidad Nacional Autónoma de México (Cuautitlán Izcalli, México)

Héctor Alejandro de la Cruz-Cruz
Universidad Nacional Autónoma de México (Cuautitlán Izcalli, México)

Rocío Silva-Mendoza
Universidad Nacional Autónoma de México (Cuautitlán Izcalli, México)

Jorge Alfredo Cuéllar-Ordaz
Universidad Nacional Autónoma de México (Cuautitlán Izcalli, México)

Resumen

Entre los principales problemas sanitarios para la producción ovina están los parásitos gastroentéricos; de ellos, el más importante es Haemonchus contortus. Las estrategias actuales de control enfocan la eficacia, junto con el bajo o nulo impacto al ecosistema; el estudio del control integral de parásitos permite la investigación de alternativas con probable efecto antihelmíntico, entre ellas el uso de semilla de papaya (Carica papaya). El objetivo de este trabajo fue evaluar el efecto in vitro de los extractos hidroalcohólico y etanólico de la semilla de papaya (C. papaya) sobre huevos y larvas de H. contortus. El trabajo se llevó a cabo con el equipo e instalaciones del Laboratorio 3 de la Unidad de Investigación Multidisciplinaria en la Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán, UNAM. Se elaboraron los extractos por medio de maceración en solvente. Se inoculó un ovino con 5000 larvas de tercer estadio (L3) de H. contortus, cepa aislada y mantenida en dichas instalaciones. Se tomaron muestras de materia fecal y se recuperaron huevos para el ensayo de inhibición de la eclosión. Los huevos y las L3 fueron pretratados con extracto hidroalcohólico y etanólico de semilla de papaya (2.5 mg/ml), agua destilada, etanol 90 % y levamisol (7.5 mg/ml). Se efectuó la técnica de explantes abomasales, evaluando el efecto de los extractos sobre las L3 y su asociación a la mucosa abomasal. Se realizó un ANOVA para muestras repetidas por medio del programa Statgraphics. El extracto etanólico de semilla de papaya mostró el 92 % de inhibición de la eclosión; el extracto hidroalcohólico mostró 50 % (p<0.05). En el caso de los explantes, el extracto etanólico mostró el 10 % de larvas no asociadas al tejido abomasal, seguido por el extracto hidroalcohólico, con el 60 % de larvas no asociadas (p<0.05). Se concluye que el extracto etanólico tiene efecto sobre huevos, mientras que el extracto hidroalcohólico inhibe la asociación al tejido abomasal.

Palabras clave

Carica papaya, extracto etanólico, extracto hidroalcohólico, Haemonchus contortus

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Citas

  1. (1) Hotez PJ., Brindley PJ., Bethony JM., King CH., Pearce EJ., Jacobson J. Helminth infections: the great neglected tropical diseases. J. of Clin. Inv. 2008; 118: 1311-1321. DOI: http://doi.org/10.1172/JCI34261. DOI: https://doi.org/10.1172/JCI34261
  2. (2) Busin V., Sargison ND. Preliminary observations on the value of using effective anthelmintic drugs to control nematode parasitism in lambs in the face of a high level of infective larval challenge. Small Rum. Res. 2014; 119: 172-175. DOI: http://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2014.02.001. DOI: https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2014.02.001
  3. (3) Muñiz Lagunes A., González Garduño R., López Arellano ME., Ramírez Valverde R., Ruíz Flores A., et al. Anthelmintic resistance in gastrointestinal nematodes from grazing beef cattle in Campeche State, México. Trop. Anim Health Prod. 2015; 47(6): 1049-1054. DOI: http://doi.org/10.1007/s11250-015-0826-3. DOI: https://doi.org/10.1007/s11250-015-0826-3
  4. (4) Waller PJ. From discovery to development: current industry perspectives for the development of novel methods of helminth control in livestock. Vet Parasitol. 2006; 139: 1-14. DOI: http://doi.org/10.1016/j.vetpar.2006.02.036. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2006.02.036
  5. (5) Klimpel S., Abdel Ghaffar F., Al Rasheid KA., Aksu G., Fischer K., Strassen B., Mehlhorn H. The effects of different plant extracts on nematodes. Parasitol Res. 2011; 108(4): 1047-1054. DOI: http://doi.org/10.1007/s00436-010-2168-4. DOI: https://doi.org/10.1007/s00436-010-2168-4
  6. (6) Knox M., Torres Acosta JFJ., Aguilar Caballero A. Exploiting the effect of dietary supplementation of small ruminants on resilience and resistance against gastrointestinal nematodes. Vet. Parasitol. 2006; 139: 385-393. DOI: http://doi.org/10.1016/j.vetpar.2006.04.026. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2006.04.026
  7. (7) Martínez Ortiz C., Vargas Magaña JJ., Aguilar Caballero AJ., Sandoval Castro CA., Cob Galera L., May Martínez M., et al. Combining the effects of supplementary feeding and copper oxide needles improves the control of gastrointestinal nematodes in browsing goats. Vet. Parasitol. 2007; 146: 66-76. DOI: http://doi.org/10.1016/j.vetpar.2007.02.012. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2007.02.012
  8. (8) Torres Acosta JFJ., Hoste H. Alternative or improved methods to limit gastro-intestinal parasitism in grazing sheep and goats. Small Rum. Res. 2008; 77: 159-173. DOI: http://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2008.03.009. DOI: https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2008.03.009
  9. (9) Rocha RA., Bresciani KDS., Barros TFM., Fernandes LH., Silva MB., Amarante AFT. Sheep and cattle grazing alternately: nematode parasitism and pasture decontamination. Small Rum. Res. 2008; 75: 135-143. DOI: http://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2007.09.001. DOI: https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2007.09.001
  10. (10) Omayma M., Abou S., Maha M., Olfat A., Nardden Zakka, B. The effect of praziquantel and Carica papaya seeds on Hymenolepis nana infection in mice using scanning electron microscope. Parasitol Res. 2014; 113: 2827- 2836. DOI: http://doi.org/10.1007/s00436-014-3943-4. DOI: https://doi.org/10.1007/s00436-014-3943-4
  11. (11) Molento MB. Parasite control in the age of drug resistance and changing agricultural practices. Vet. Parasitol. 2009; 163: 229-234. http://doi.org/10.1007/s00436-014-3943-4. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2009.06.007
  12. (12) Bar Nun N., Mayer AM. Cucurbitacins protect cucumber tissue against infection by Botrytis cinerea. Phytochemistry. 1990; 29:787-791. DOI: http://doi.org/10.1016/0031-9422(90)80019-D. DOI: https://doi.org/10.1016/0031-9422(90)80019-D
  13. (13) Bautista O., Ovalle C. Evaluación de la eficacia de un preparado acuoso de semilla de papaya (Carica papaya) contra Haemonchus contortus en ovinos con infección artificial. Tesis de licenciatura. Universidad Nacional Autónoma de México. Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán. 2012.
  14. (14) Valdez Ramírez L., Cuéllar Ordaz J. Aislamiento de una cepa de Haemonchus contortus de origen ovino. Tesis que para obtener el título de Médico Veterinario Zootecnista. Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán- UNAM. 2009.
  15. (15) Van Wyk J., Mayhew E. Morphological identification of parasitic nematode infective larvae of small ruminants and cattle: A practical lab guide. J. Vet. Res. 2013; 80: 1-14. DOI: http://doi.org/10.4102/ojvr.v80i1.539. DOI: https://doi.org/10.4102/ojvr.v80i1.539
  16. (16) Coles G., Borgsteede F., Geerts S., Klei T., Taylor M., Waller P. World Association for the Advancement of Veterinary Parasitology (W.A.A.V.P.) methods for the detection of anthelmintic resistance in nematodes of veterinary importance. Vet. parasitol. 1992; 44: 35-44. DOI: http://doi.org/10.1016/0304-4017(92)90141-U. DOI: https://doi.org/10.1016/0304-4017(92)90141-U
  17. (17) Carvalho C., Chagas A., Cotinguiba F., Furlan M., Brito L., Chaves C., et al. The anthelmintic effect of plant extracts on Haemonchus contortus and Strongyloides venezuelensis. Vet. Parasitol. 2012; 183: 260-268. DOI: http://doi.org/10.1016/j.vetpar.2011.07.051. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2011.07.051
  18. (18) Jackson F., Greer A., Huntley J., McAnulty R., Bartley D., Stanley A., et al. Studies using Teladorsagia circumcincta in an in vitro direct challenge method using abomasal tissue explants. Vet. Parasitol. 2004; 124: 73-89. DOI: http://doi.org/10.1016/j.vetpar.2004.06.025. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2004.06.025
  19. (19) Batatinha M., Santos M., Botura M., Almeida G., Domingues J., Almeida M. Efeitos in vitro dos extratos de folhas de Musa cavendishii Linn e de sementes de Carica papaya Linn sobre culturas de larvas de nematódeos gastrintestinais de caprinos. Rev. Bras. PL. Med. Botucatu. 2004; 7(1): 11-15.
  20. (20) Kermanshai R., McCarry BE., Rosenfeld J. Benzylisothiocyanate is the chief or sole anthelmintic in papaya seed extracts. Phytochemistry. 2001; 57: 427-435. DOI: http://doi.org/10.1016/S0031-9422(01)00077-2. DOI: https://doi.org/10.1016/S0031-9422(01)00077-2
  21. (21) Kumar D., Mishra S., Tripathi H. Mechanism of anthelmintic action of benzylisothiocyanate. Fitoterapia. 1991; 65(5): 403-410.
  22. (22) Buttle D., Behnke J., Bartley Y., Elsheikha H., Bartley D., Garnett M. Oral dosing with papaya latex is an effective anthelmintic treatment for sheep infected with Haemonchus contortus. Parasites and vectors. 2001; 4-36. DOI: https://doi.org/10.1186/1756-3305-4-36
  23. (23) Reyna T. Características climático-frutícolas en Cuautitlán Estado de México. Invest. Geog. 1977; 8: 55-66.

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