Efecto de la colchicina sobre la morfología foliar y los estomas de <i>Kalanchoe daigremontiana</i> Raym.-Hamet & H.Perrier (Crassulaceae)

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Autores

Seir Antonio Salazar M. http://orcid.org/0000-0002-3287-703X
Guillermo Javier Valderrama R. http://orcid.org/0000-0001-7432-9667
Jesús David Quintero C. http://orcid.org/0000-0002-2011-2638

Resumen

El presente estudio evaluó el efecto de diferentes concentraciones y tiempo de exposición de colchicina, sobre la morfología foliar y los estomas de Kalanchoe daigremontiana. Inicialmente, se recolectaron y se sometieron las plántulas de K. daigremontiana a concentraciones de 0,025% y 0,1% (p/v) de colchicina y a dos tiempos de exposición (24 y 48 horas). Posteriormente, se realizaron estudios morfológicos como la altura de la planta (AP), anchura de la hoja (AH), número de hojas (NH), longitud foliar (LH), espesor de hoja (EH) y volumen foliar (VH) cada 15 días, durante 16 semanas después de la siembra. Luego, se caracterizaron los estomas, teniendo en cuenta el ancho, el largo, índice estomático y el número de cloroplasto por estoma. Se encontró un incremento significativo en la morfología foliar y estomática, en los tratamientos con colchicina de 0,025% a 24 y 48 horas. Lo que demuestra que el uso de la colchicina logra un mayor crecimiento en poco tiempo y aumento de la biomasa en la planta medicinal K. daigremontiana.

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Referencias

Abdel-Raouf, H.S. 2012. Anatomical traits of some species of Kalanchoe (Crassulaceae) and their taxonomic value. Ann. Agric. Sci. 57(1), 73-79. Doi: 10.1016/j.aoas.2012.03.002

Aria, M., M. Angarita, A. Aguirre, J. Restrepo y C. Montoya. 2009. Estrategias para incrementar la producción de metabolitos secundarios en cultivos de células vegetales. Rev. Fac. Nal. Agr. Medellín 62(1), 4881-4895.

Aryavand, A., B. Ehdaie, B. Tran, J.G. Waines. 2003. Stomatal frequency and size differentiate ploidy levels in Aegilops neglecta. Genet. Resour. Crop. Evol. 50, 175-182. Doi: 10.1023/A:1022941532372

Beck, S.L., R.W. Dunlop y A. Fossey, 2003. Stomatal length and frequency as a measure of ploidy level in black wattle, Acacia mearnsii (de Wild). Bot. J. Linn. Soc. 141, 177-181. Doi: 10.1046/j.1095-8339.2003.00132.x

Choque, E., R. Espinoza, X. Cadima, J. Zeballos y J. Gabriel. 2007. Resistencia a helada en germoplasma de papa nativa de Bolivia. Rev. Latinoam. Papa 14(1), 24-32.

Foley, W. y B. Moore. 2005. Plant secondary metabolites and vertebrate herbivores-from physiological regulation to ecosystem function. Curr. Opin. Plant. Biol. 8(4), 430-435. Doi: 10.1016/j.pbi.2005.05.009

Foschi, M., L. Martínez, M. Ponce, C. Galmarini y B. Bohanec. 2013. Effect of colchicine and amiprophos-methyl on the production of in vitro doubled haploid onion plants and correlation assessment between ploidy level and stomatal size. Rev. Fac. Cienc. Agrar. 45(2), 155-164.

Ganem, D., M. Equiza, M. Lorenzo y J. Tognetti. 2014. Cambios en la anatomía epidérmica foliar de cereales de clima templado en respuesta al frío. Rev. Fac. Agron. Univ. Nac. La Plata 113(2), 157-164.

Garcês, H., C. Champagne, B. Townsley, S. Park, R. Malhó, M. Pedroso, J. Harada y N. Sinha. 2007. Evolution of asexual reproduction in leaves of the genus Kalanchoë. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 104(39), 15578-15583. Doi: 10.1073/pnas.0704105104

Gordillo, F., F. Zárate, C. Mejía, L. Rivera y H. Calderón. 2008. Análisis de la actividad fotosintética de plantas de café utilizando la técnica fotoacústica. Rev. Colomb. Física 40(1), 186-189.

Hannweg, K., G. Visser, K. Jager y I. Bertling. 2016. In vitro- induced polyploidy and its effect on horticultural characteristics, essential oil composition and bioactivity of Tetradenia riparia. S. Afr. J. Bot. 106, 186-191. Doi: 10.1016/j.sajb.2016.07.013

Herrera, I., N. Chacón, S. Flores, D. Benzo, J. Martínez, B. García y J. Hernández-Rojas. 2011. La planta exótica Kalanchoe daigremontiana incrementa el reservorio y flujo de carbono en el suelo. Interciencia 36(12), 937-942.

Hetherington, A. y F. Woodward. 2003. The role of stomata in sensing and driving environmental change. Nature 424, 901-908. Doi: 10.1038/nature01843

Imery, J.H. y H. Cequea. 2001. Colchicine-induce autotetraploid in Aloe vera L. Cytologia 66, 409-413. Doi: 10.1508/cytologia.66.409

Khazaei, H., P. Monneveux, S. Hongbo y S. Mohammady. 2010. Variation for stomatal characteristics and water use efficiency among diploid, tetraploid and hexaploid Iranian wheat landraces. Genet. Resour. Crop Evol. 57, 307-314. Doi: 10.1007/s10722-009-9471-x

Kolodziejczyk-Czepas, J., M. Sieradzka, B. Moniuszko-Szajwaj, L. Peciob, M. Ponczek, P. Nowak y A. Stochmal. 2017. Bufadienolides from Kalanchoe daigremontiana as thrombin inhibitors: In vitro and in silico study. Int. J. Biol. Macromol. 99, 141-150.

Doi: 10.1016/j.ijbiomac.2017.02.051 Majaz, Q., S. Nazim, S. Afsar, S. Siraj y P. Siddik. 2011. Evaluation of antimicrobial activity of roots of Kalanchoe pinnata. Int. J. Pharmacol. Bio. Sci. 5(1), 93-96.

Matos, Á. 2014. Efecto de diferentes concentraciones y tiempos de exposición de la colchicina en plantas de zábila [Aloe vera (L.) Burm. f.] in vivo. Multiciencias 14(4), 382-388.

Mora-Pérez, A. y M.R. Hernández-Medel. 2016. Actividad anticonvulsivante del extracto metanólico de tallo y raíz de Kalanchoe pinnata Lam. en ratones: comparación con diazepam. Neurología 31(3), 161-168. Doi: 10.1016/j.nrl.2015.06.008

Okwu, D.E. y F.U. Nnamdi. 2011. Two novel flavonoids from Bryophyllum pinnatum and their antimicrobial activity. J. Chem. Pharm. Res. 3(2), 1-10.

Orrillo, M. y M. Bonierbale. 2009. Manual técnico biología reproductiva y citogenética de la papa. Centro Internacional de la Papa (CIP), Lima, Perú.

Planchais, S., N. Glab, D. Inzé y C. Bergounioux. 2000. Chemical inhibitors: a tool for plant cell cycle studies. FEBS Letters 476(1-2), 78-83. Doi: 10.1016/S0014-5793(00)01675-6

Poggio, L., S.M. Espert y R. Fortunato. 2008. Citogenética evolutiva en leguminosas americanas. Rodriguésia 59(3), 423-433.

Puertas, M., J. Tobón y V. Arango. 2014. Kalanchoe daigremontiana Raym.-Hamet. & H. y su potencial uso como fuente de antioxidantes y colorantes naturales. Rev. Cubana Plant. Med. 19(1), 61-68.

Quintero, M., R. Behar, C. García, D. Pupo, M. Hernández, J. Díaz y F. Pérez. 2009. Aloe gel viscoso® en el tratamiento de pacientes con úlcera duodenal y Helicobacter pylori positivo. Rev. Cubana Plant. Med. 14(4), 1-6.

Ramírez L., Y.A. 2007. Cúcuta. pp. 135-155. En: Hermelín, M. (ed.). Entorno natural de 17 ciudades de Colombia. Ediciones Universidad EAFIT, Medellín, Colombia.

Sadat, S., M. Norouzi, G. Karimzadeh, K. Shirkoo y M. Niazian. 2017. Effect of colchicine-induced polyploidy on morphological characteristics and essential oil composition of ajowan (Trachyspermum ammi L.). Plant Cell Tiss. Organ Cult. 130, 543-551. Doi: 10.1007/s11240-017-1245-0

Salahdeen, H.M. y O.K. Yemitan. 2006. Neuropharmacological effects of aqueous leaf extract of Bryophyllum pinnatum in mice. Afr. J. Biomed. Res. 9. 101-107. Doi: 10.4314/ajbr.v9i2.48782

Sánchez, A. y Á. Matos. 2012. Efectos del uso de la colchicina como inductor de poliploidía en plantas de zábila (Aloe vera L.) in vivo. Rev. Univ. Zulia 3(6), 119-139.

Sattler, M., C. Carvalho y W. Clarindo. 2016. The polyploidy and its key role in plant breeding. Planta 243(2), 281- 296. Doi: 10.1007/s00425-015-2450-x

Saz-Peiró, P. y M.C. Tejero-Lainez. 2016. Fitoterapia en la prevención y tratamiento del cáncer. Medicina Naturista 10(2), 88-99.

Standring, L., G. Pringle y B. Murray. 1990. The control of chloroplast number in Solanum muricatum Ait. and Cyphomandra betacea (Cav.) Sendt. and its value as an indicator of polyploidy. Euphytica 47(1), 71-77. Doi: 10.1007/BF00040366

Tambong, J., V. Sapra y S. Garton. 1998. In vitro induction of tetraploids in colchicine-treated cocoyam plantlets. Euphytica 104, 191-197. Doi: 10.1023/A:1018609020397

Tkalec, M., D. Car, J. Gospočić, I. Križaić, K. Duž y Ž. Vidaković-Cifrek. 2012. Response of Kalanchoe daigremontiana to wounding and infection with Agrobacterium tumefaciens. Period. Biol. 114(1), 83-90.

Tukey, J.W. 1953. The problem of multiple comparisons. pp. 1-300. En: Braun, H.L. (ed.). The collected works of John W. Tukey. Vol. 8. Multiple comparisons: 1948-1983. Chapman and Hall, New York, NY, USA.

Urwin, N.A.R. 2014. Generation and characterisation of colchicine-induced polyploid Lavandula × intermedia. Euphytica 197(3), 331-339. Doi: 10.1007/s10681-014-1069-5

Urwin, N.A.R., J. Horsnell y T. Moon. 2007. Generation and characterisation of colchicine-induced autotetraploid Lavandula angustifolia. Euphytica 156, 257-266. Doi: 10.1007/s10681-007-9373-y

Wilkinson, H. 1979. The plant superface (mainly leaf). pp. 97-165. En: Metcalfe, C.R. y L. Chalk (eds.). Anatomy of dicotyledons. Claredon Press, Oxford, UK.

Yang, X.M., Z.Y. Cao, L.Z. An, Y.M. Wang y X.W. Fang. 2006. In vitro tetraploid induction via colchicine treatment from diploid somatic embryos in grapevine (Vitis vinifera L.). Euphytica 152, 217-224. Doi: 10.1007/s10681-006-9203-7

Zhang, Z., H. Dai, M. Xiao y X. Liu. 2008. In vitro induction of tetraploids in Phlox subulata L. Euphytica 159, 59-65. Doi: 10.1007/s10681-007-9457-8

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