Ir al menú de navegación principal Ir al contenido principal Ir al pie de página del sitio

Vol. 15 Núm. 2 (2024)
Vol. 15 Núm. 2 (2024): Vol 15, Núm.2 (2024): Julio-Diciembre

Artículos de investigación / Research papers

Obtención De Un Aislado Proteico, A Partir De Harina De Quinua Boyacense (Chenopodium quinoa), Mediante Métodos Combinados

https://doi.org/10.19053/01217488.v15.n2.2024.16033

Publicado 2024-10-10

  • ivan niño bernal
    • ,
  • Gerardo Andrés Caicedo Pineda

ivan niño bernal
Pedagogical and Technological University of Colombia image/svg+xml

Gerardo Andrés Caicedo Pineda
Pedagogical and Technological University of Colombia image/svg+xml

Resumen

La quinua es un pseudocereal que es conocido por su alto contenido de proteína vegetal. El presente estudio se enfocó en obtener un aislado proteico, utilizando diferentes metodologías de extracción. La caracterización inicial de la harina de quinua en base seca (QF) mostró un contenido de proteína del 16 % y de almidón del 53 %. Se establecieron los mejores valores de pH, a través de curvas de solubilidad, y se llevaron a cabo extracciones en soluciones 0 % y 1 % de NaCl, obteniendo un rendimiento del 38 % de proteína. Posteriormente, se empleó una extracción fraccionada, lo que permitió aumentar el rendimiento proteico al 42 %. Por último, se aplicó una hidrólisis enzimática del almidón presente en la harina, que actúa como interferente en la extracción proteica. El uso combinado de la hidrólisis enzimática y la extracción fraccionada permitió obtener un aislado proteico con un alto porcentaje de pureza (~55 %). Este estudio demostró que la combinación de diferentes metodologías de extracción puede mejorar significativamente el rendimiento y pureza del producto final.

Palabras clave

α-amilasa; aislado proteico; extracción fraccionada; hidrólisis enzimática; quinoa

Citas

  1. W. Rojas, G. Alandia, J. Irigoyen, J. Blajos, and T. Santivañez, “La Quinua: Cultivo milenario para contribuir a la seguridad alimentaria mundial,” 2011. doi: 10.1016/j.jaridenv.2009.03.010.
  2. A. Guerrero-López, “Impacto del cultivo de la quinua (Chenopodium quinoa Willd) como alternativa productiva y socioeconómica en la comunidad indígena Yanacona de La Vega, Cauca, Colombia,” 2018.
  3. Ministerio de agricultura y desarrollo rural, “En los últimos 4 años, la quinua ha tenido un crecimiento de más del 150% en áreas de producción,” 2018. https://www.minagricultura.gov.co/noticias/Paginas/En-los-últimos-4-años,-la-quinua-ha-tenido-un-crecimiento-de-más-del-150-en-áreas-de-producción-.aspx#:~:text=Se estima que el área,%2C Nariño%2C Boyacá y Cundinamarca.
  4. J. P. Rodríguez, H. Rahman, S. Thushar, and R. K. Singh, “Healthy and Resilient Cereals and Pseudo-Cereals for Marginal Agriculture: Molecular Advances for Improving Nutrient Bioavailability,” Front Genet, vol. 11, no. February, pp. 1–29, 2020, doi: 10.3389/fgene.2020.00049.
  5. L. C. A. RIVERA and A. K. H. HERNÁNDEZ, “CALIDAD Y GERMINACIÓN DE SEMILLAS DE QUINUA Chenopodium quinoa Willd. ALMACENADAS ARTESANALMENTE POR PRODUCTORES.,” UNIVERSIDAD DE CIENCIAS APLICADAS Y AMBIENTALES U.D.C.A, 2017. doi: 10.1038/132817a0.
  6. L. E. Abugoch James, Quinoa (Chenopodium quinoa Willd.): Composition, chemistry, nutritional, and functional properties, 1st ed., vol. 58, no. 09. Elsevier Inc., 2009. doi: 10.1016/S1043-4526(09)58001-1.
  7. F. M. Montes, J. P. P. Vázquez, and H. R. Rosas, BIOQUÍMICA DE LAGUNA Y PIÑA. 2018.
  8. M. Amor Lluch, “Influencia de la germinación en la obtención de aislados proteicos de altramuz,” Sep. 2022, Accessed: Jul. 23, 2023. [Online]. Available: https://riunet.upv.es:443/handle/10251/186564
  9. C. A. Gamboa Hipolito and B. Llanos Caballero, “Métodos de extracción de proteína y sus aplicaciones en el mejoramiento nutricional de productos Agroindustriales,” Journal of Agro-industry Sciences, vol. 4, no. 3, pp. 133–140, Dec. 2022, doi: 10.17268/jais.2022.016.
  10. Z. Gao et al., “Effect of alkaline extraction pH on structure properties, solubility, and beany flavor of yellow pea protein isolate,” Food Research International, vol. 131, no. January, p. 109045, 2020, doi: 10.1016/j.foodres.2020.109045.
  11. M. L. Sosa-Flores, D. G. García-Hernández, C. A. Amaya-Guerra, M. Bautista-Villarreal, and A. R. González-Luna, “Obtención de aislados e hidrolizados proteicos de grillo (Acheta domesticus) y evaluación de su actividad antioxidante,” 2023.
  12. L. D. López Quimbayo, “Extracciòn a partir de hojas y semillas de Pentacalia nítida y evaluaciòn de la actividad antimicrobiana del extracto proteico acuoso,” 2012.
  13. C. Gutiérrez Paz Nutricionista et al., “EXTRACCIÓN DE AISLADO PROTEICO DE QUINUA (Chenopodium quinua: variedad blanca Junín) COMO ALTERNATIVA PARA EL USO EN SUPLEMENTOS ALTOS EN PROTEÍNA,” 2022.
  14. C. L. Kielkopf, W. Bauer, and I. L. Urbatsch, “Bradford assay for determining protein concentration,” Cold Spring Harb Protoc, vol. 2020, no. 4, pp. 136–138, 2020, doi: 10.1101/pdb.prot102269.
  15. N. J. Kruger, “The Bradford Method For Protein Quantitation,” Basic Protein and Peptide Protocols, pp. 17–24, 2009.
  16. G. L. Miller, “Use of Dinitrosalicylic Acid Reagent for Determination of Reducing Sugar,” Anal Chem, vol. 31, no. 3, pp. 426–428, 1959, doi: 10.1021/ac60147a030.
  17. I. P. Wood, A. Elliston, P. Ryden, I. Bancroft, I. N. Roberts, and K. W. Waldron, “Rapid quantification of reducing sugars in biomass hydrolysates: Improving the speed and precision of the dinitrosalicylic acid assay,” Biomass Bioenergy, vol. 44, pp. 117–121, Sep. 2012, doi: 10.1016/j.biombioe.2012.05.003.
  18. M. Buchanan, “TAPPI 204 cm-97,” Nanofibers - Production, Properties and Functional Applications, 2007, doi: 10.5772/916.
  19. C. R. Bernal Bustos, L. F. Ramírez, P. D. Duarte, A. M. Guzmán, and J. Acero, “Quinua, Chenopodium quinua (Willd.) en Colombia Caracterización de granulos de almidón nativo de quinua por IR-ATR, MEB, DRX,” Rev Invest (Guadalajara), vol. 8, no. 2, pp. 122–131, 2015, doi: 10.29097/2011-639x.31.
  20. S. A. Elsohaimy, T. M. Refaay, and M. A. M. Zaytoun, “Physicochemical and functional properties of quinoa protein isolate,” Annals of Agricultural Sciences, vol. 60, no. 2, pp. 297–305, 2015, doi: 10.1016/j.aoas.2015.10.007.
  21. José J. Martínez, Oscar J. Medina, and Rocio Zambrano, “Estudio fisicoquímico funcional de los aislados proteicos en semillas de maracuya(Passiflora eduli s f).,” vol. 9, 2011.
  22. M. Föste, D. Elgeti, A. K. Brunner, M. Jekle, and T. Becker, “Isolation of quinoa protein by milling fractionation and solvent extraction,” Food and Bioproducts Processing, vol. 96, pp. 20–26, 2015, doi: 10.1016/j.fbp.2015.06.003.
  23. S. A. Elsohaimy, T. M. Refaay, and M. A. M. Zaytoun, “Physicochemical and functional properties of quinoa protein isolate,” Annals of Agricultural Sciences, vol. 60, no. 2, pp. 297–305, 2015, doi: 10.1016/j.aoas.2015.10.007.
  24. C. Valenzuela, L. Abugoch, C. Tapia, and A. Gamboa, “Effect of alkaline extraction on the structure of the protein of quinoa (Chenopodium quinoa Willd.) and its influence on film formation,” Int J Food Sci Technol, vol. 48, no. 4, pp. 843–849, 2013, doi: 10.1111/ijfs.12035.
  25. B. Eab and S. Mpc, “EFECTOS DE LA SAL SOBRE LA SOLUBILIDAD Y LAS PROPIEDADES EMULSIONANTES DE LA CASEÍNA,” 2006.
  26. D. Voet and J. G. Voet, Bioquimica Voet 3ed.
  27. R. Lodeiro, Catálisis enzimática Fundamentos químicos de la vida, vol. 1. 2017.
  28. R. c. Bohinski, bioquímica. 1967.
  29. M. N. Perović, Z. D. Knežević Jugović, and M. G. Antov, “Improved recovery of protein from soy grit by enzyme-assisted alkaline extraction,” J Food Eng, vol. 276, no. December 2019, 2020, doi: 10.1016/j.jfoodeng.2019.109894.
  30. A. Vera, M. A. Valenzuela, M. Yazdani-Pedram, C. Tapia, and L. Abugoch, “Conformational and physicochemical properties of quinoa proteins affected by different conditions of high-intensity ultrasound treatments,” Ultrason Sonochem, vol. 51, no. October 2018, pp. 186–196, 2019, doi: 10.1016/j.ultsonch.2018.10.026.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.