Morfología y patogenicidad de Rhizoctonia solani Kühn asociado con la costra negra de la papa en Nariño (Colombia)

Contenido principal del artículo

Autores

Carlos A. Betancourth-García https://orcid.org/0000-0001-6573-4230
Bertha Lucía Castro-Caicedo https://orcid.org/0000-0003-3207-1834
Claudia Quiroz-Ojeda https://orcid.org/0000-0002-0676-7427
Benjamin Sañudo-Sotelo https://orcid.org/0000-0001-9943-5650
Carlos Florez-Casanova https://orcid.org/0000-0003-1626-5727
Claudia Salazar-González https://orcid.org/0000-0002-5461-2761

Resumen

El objetivo de la investigación fue conocer la diversidad de Rhizoctonia solani en cultivos de papa en el departamento de Nariño. Se colectaron tubérculos con esclerocios en fincas de los municipios de Pasto, Ipiales, Túquerres y Ospina. En laboratorio, los aislamientos se agruparon en categorías, seleccionando 30 para los estudios morfológicos y patogénicos. En medio PDA, se determinó la tasa diaria de crecimiento micelial (TDCM), color, textura, patrón de crecimiento (PC) y características de los esclerocios. Se evaluó ancho de hifas y número de núcleos. Para pruebas de patogenicidad se utilizaron plántulas de papa Solanum tuberosum L. Group Phureja. Se obtuvieron 494 aislamientos con características culturales variadas, agrupados en 15 categorías, seleccionando dos de cada grupo para la investigación. Los 30 aislamientos mostraron diferencias significativas en la TDCM y según prueba de Tukey (P=0,05%), el 96,6% tuvo un promedio de 16,6 mm día-1. Colonias de 15 días de edad presentaron colores crema, beige, marrón y salmón. El 95% de los aislamientos formaron micelio afelpado con PC radial simple, radial complejo, disperso y estrellado. La formación de esclerocios se inició a los 6 días y a los 15 mostraron disposición dispersa y periférica, con colores marrón, beige y crema. Tres aislamientos no produjeron esclerocios. El ancho de hifas tuvo un promedio de 9,7 μm y entre 7.2-8.2 núcleos, sin diferencias estadísticas. Veinticuatro aislados causaron 100% de infección en las plantas. Los resultados sugieren diferencias entre aislamientos, asociados con patogenicidad o grupos de anastomosis, características que serán estudiadas en futuras investigaciones.

Palabras clave:

Detalles del artículo

Licencia

Creative Commons License
Esta obra está bajo licencia internacional Creative Commons Reconocimiento-NoComercial-CompartirIgual 4.0.

El copyright de los artículos e ilustraciones son propiedad de la Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas. Los editores autorizan el uso de los contenidos bajo la licencia Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0). La citación correcta de los contenido deben registrar de forma explícita el nombre de la revista, nombre(s) del (de los) autor(es), año, título del artículo, volumen, número, página del artículo y DOI. Se requiere un permiso escrito a los editores para publicar más que un resumen corto del texto o las figuras.

Referencias

Abdel-Sattar, M., H. El-Marzouky, and U.E. Ibrahim. 2017. Test and anastomosis group of Rhizoctonia solani the causal organism of stem canker and black scurf disease of potato in Egypt. J. Appl. Plant Prot. 6(1), 1-8. Doi: https://doi.org/10.21608/japp.2017.7494

Alban, M.A.P. 2015. Identificación, aislamientos, caracterización y evaluación de la capacidad de infección en tubérculos de Rhizoctonia solani de suelos paperos en la Provincia del Carchi. Undergraduate thesis. Universidad de las Fuerzas Armadas, Sangolqui, Ecuador.

Álvarez-Sánchez, D., A. Hurtado-Benavides, D. Chaves-Morillo, and D. Andrade-Díaz. 2018. Actividad biocida del aceite esencial de Lippia origanoides H.B.K. (Verbenaceae) sobre Rhizoctonia solani: in vitro. Rev. Colomb. Cienc. Hortic. 12(3), 668-676. Doi: https://doi.org/10.17584/rcch.2018v12i3.7801

Atkinson, D., M. Thornton, and J. Miller. 2010. Development of Rhizoctonia solani on stems, stolons and tubers of potatoes. I. Effect of inoculum source. Am. J. Potato Res. 87, 374-381. Doi: https://doi.org/10.1007/s12230-010-9143-6

Bandoni, R.J. 1979. Safranin-O as a rapid nuclear stain for fungi. Mycologia (71), 873-874. Doi: https://doi.org/10.1080/00275514.1979.12021088

Carling, D. 1996. Grouping in Rhizoctonia solani by hyphal anastomosis interactions. pp. 37-47. In: Senh, B., S. Jabaji- Hare, S. Neate, and G. Dijst (eds.). Rhizoctonia species: taxonomy, molecular biology, ecology, pathology, and disease control. Kluwer Academic Publishers Dordrecht, The Netherlands. Doi: https://doi.org/10.1007/978-94-017-2901-7_3

Carling, D.E. and R.H. Leiner. 1990. Virulence of isolates of Rhizoctonia solani AG-3 collected from potato plants and soil. Plant Dis. 74, 901-903. Doi: https://doi.org/10.1094/PD-74-0901

Castro, C.B.L., A.J. Carreño, N.F. Galeano, X.J. Roux, J.M. Wingfield, and A.L. Gaitán. 2013. Identification and genetic diversity of Rosellinia spp. Associated with root rot of coffee in Colombia. Australas. Plant Pathol. 42, 515-523. Doi: https://doi.org/10.1007/s13313-013-0205-3

Castro, A. and C. Rivillas. 2012. Trichoderma spp.: Modos de acción, eficacia y usos en el cultivo de café. Bol. Téc. Cenicafé 38. Fedecafe, Chinchiná, Colombia.

Chañag, H.A., Álvarez, S.L., Lagos, L.E. y Burbano-David, D.M. 2018. Sensibilidad de aislamientos de Phytophthora infestans procedentes de Solanum tuberosum a tres fungicidas sistémicos. Rev. Colomb. Cienc. Hortic. 12(3), 592-601. Doi: http://doi.org/10.17584/rcch.2018v12i3.7859

Das, S., F.A. Shah, R.C. Butler, R.E. Fallon, A. Stewart, S. Raikar, and A.R. Pitman. 2014. Genetic variability and pathogenicity of Rhizoctonia solani associated with black scurf of potato in New Zealand. Plant Pathol. 63, 651-666. Doi: https://doi.org/10.1111/ppa.12139

Dubey, S.C., A. Tripathi, B.K. Upadhyay, and U.K. Deka. 2014. Diversity of Rhizoctonia solani associated with pulse crops in different agro-ecological regions of India. World J. Microbiol. Biotechnol. 30, 1699-1715. Doi: https://doi.org/10.1007/s11274-013-1590-z

Escalona, Y., D. Rodríguez, and A. Hernández. 2011. Rhizoctonia solani Kühn aislado de papa (Solanum tuberosum L.) en los estados Táchira, Mérida, Trujillo y Lara. I. Caracterización cultural. Bioagro 23(3), 161-168.

FEDEPAPA, Federación Colombiana de Productores de Papa. 2019. Nariño. Bol. Reg. 3. Bogota.

Ferrucho, R., P. Ceresini, U. Ramirez, A. McDonald, A. Cubeta, and C. García-Domínguez. 2013. The population genetic structure of Rhizoctonia solani AG-3PT from potato in the Colombian Andes. Phytopathology 103(8), 862-869. Doi: https://doi.org/10.1094/PHYTO-11-12-0278-R

Ferrucho, R.L., J.M. Cifuentes, P. Ceresini, and C. García-Domínguez. 2012. Rhizoctonia solani AG-3PT is the major pathogen associated with potato stem canker and black scurf. Agron. Colomb. 30(2), 204-213.

Fiers, M., V. Edel-Hermann, N. Gautheron, C. Chatot, Y. Hingrat, K. Bouchek-Mechiche, and C. Steinberg. 2011. Genetic diversity of Rhizoctonia solani associated with potato tubers in France. Mycologia 103(6), 1230-1244. Doi: https://doi.org/10.3852/10-231

Gondal, A.S., A. Rauf, and F. Naz. 2019. Anastomosis Groups of Rhizoctonia solani associated with tomato foot rot in Pothohar Region of Pakistan. Sci. Rep. 9, 3910. Doi: https://doi.org/10.1038/s41598-019-40043-5

ICA, Instituto Colombiano Agropecuario. 2011. Manejo fitosanitario del cultivo de la papa (Solanum tuberosum subsp. Andigena y S. phureja) -Medidas para la temporada invernal. Bogota.

Kramer, L.A. 2004. The online auction color chart: the new language of color for buyers and sellers. Online Auction Color Chart Co., Palo Alto, CA.

Misawa, T. and D. Kurose. 2018. First report of binucleate Rhizoctonia AG U causing black scurf on potato tubers in Japan. New Dis. Rep. 38, 24. Doi: https://doi.org/10.5197/j.2044-0588.2018.038.024

Misawa, T. and D. Kurose. 2019. Anastomosis group and subgroup identification of Rhizoctonia solani strains deposited in NARO Genebank, Japan. J. Gen. Plant Pathol. 85, 282-294. Doi: https://doi.org/10.1007/s10327-019-00848-8

Misawa, T., D. Kurose, N. Mori, and T. Toda. 2018. Characterization of Japanese Rhizoctonia solani AG-2-1 isolates using rDNA-ITS sequences, culture morphology, and growth temperature. J. Gen. Plant Pathol. 84, 387-394. Doi: https://doi.org/10.1007/s10327-018-0808-1

Muzhinji, N., M. Truter, J.W. Woodhall, and J.E. van der Waals. 2015. Anastomosis groups and pathogenicity of Rhizoctonia solani and binucleate Rhizoctonia from potato in South Africa. Plant Dis. 99, 1790-1802. Doi: https://doi.org/10.1094/PDIS-02-15-0236-RE

Oliveira, A.C., P.E. Souza de, E.A. Pozza, A.D.R. Fugueira, G.D. Avelar, E.A. Gomez, and F.P. Monteiro. 2014. Caracterização morfológica, genética e patogenicidade de isolados de Rhizoctonia solani provenientes de algodoeiros no Brasil. Biosci. J. 30(5), 512-524.

Sneh, B., L. Burpee, and A. Ogoshi. 1991. Identification of Rhizoctonia solani species. APS Press, Saint Paul, MN.

Tsror, L. 2010. Biology, epidemiology and management of Rhizoctonia solani on potato. J. Phytopathol. 158, 649-658. Doi: https://doi.org/10.1111/j.1439-0434.2010.01671.x

Zhan, J. 2016. Population genetics of plant pathogens. eLS; John Wiley & Sons, Chichester, UK. Doi: https://doi.org/10.1002/9780470015902.a0021269.pub2

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.