Ir al menú de navegación principal Ir al contenido principal Ir al pie de página del sitio

Vol. 7 Núm. 1 (2016)
Enero a Junio

Revisiones/Reviews

Caracterización y extracción lipídica de las semillas del cacao amazónico [Theobroma grandiflorum].

https://doi.org/10.19053/01217488.4237

Publicado 2016-02-15

  • E. Alviárez G.
    • ,
  • W. Murillo A.
    • ,
  • E. Murillo P.
    • ,
  • B. A. Rojano
    • ,
  • J. J. Méndez A.

Resumen

La pulpa de Theobroma grandiflorum, conocido comúnmente como copoazú, es utilizada para la preparación de mermeladas, jugos, yogurt, néctares y dulces, y sus semillas son aprovechadas para la elaboración de cupulate, bebida equivalente al chocolate. En Colombia existe poca información sobre las propiedades de este fruto, especialmente de los ácidos grasos presentes en las semillas, las cuales podrían ser de gran interés para la industria alimentaria. En este estudio se identificó y analizó el contenido de ácidos grasos presentes en el aceite extraído de las semillas de copoazú en madurez fisiológica y sus índices de calidad, además, se midió el potencial antioxidante del aceite mediante el ensayo ORAC, lo anterior como aproximación al conocimiento del uso potencial alimenticio o nutracéutico de uno de los frutos exóticos de la amazonia de poco conocimiento en Colombia. La identificación de ácidos grasos reveló que hay mayor contenido de ácido oleico (36,3%), esteárico (29,27%) y palmítico (7,26%), los índices de calidad, como la saponificación (1,88,15 mg KOH/g muestra), yodo (49,33 g de I/g de grasa) y acidez (1,04 mg KOH/g muestra), muestran que el aceite de copoazú podría ser utilizado en la industria alimentaria y cosmética. 

Palabras clave

Ácidos grasos, copoazú, índices de calidad, potencial nutricional, Theobroma grandiflorum. (Fatty Acids, Nutritional Potential, Qualities Indices, Theobroma Grandiflorum.)

PDF

Citas

  1. S. Rojas, J. Zapata, E. Pereira y E. Varon, El cultivo del copoazú (Theobroma grandiflorum) en el piedemonte amazónico colombiano. Corpoica, Convenio de Cooperación Gobierno deColombia- Unión Europea, 1998.
  2. G. A. Bataglion, F M. da Silva, J. M. Santos, F. N. dos Santos, M. T. Barcia, C. C. de Lourenço, M. Salvador, H. Godoy, M. Eberlin, and H.
  3. H. Koolen, “Comprehensive characterization of lipids from Amazonian vegetable oils by mass spectrometry techniques”, Food Research International, vol. 64, pp. 472-481, 2014. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodres.2014.07.011
  4. M. B. MacLenan, S. E. Clarke, K. Pére, G. A. Madera, W. J. Muller, J. X. Kang, and D. W. Ma, “Mammary tumor development is directly
  5. inhibited by lifelong n-3 polyunsaturated fatty acids”, The Journal of nutritional biochemistry, vol. 24, no. 1, pp. 388-395, 2013. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jnutbio.2012.08.002
  6. C. Belén, I. López, J. Barranco, D. García, M. Moreno y O. Linares, “Caracterización fisicoquímica del aceite de la semilla de Píritu
  7. (Bactris piritu (H. Karst) H. Wendl)”. Grasas y Aceites, vol. 55, no. 2, pp. 138-142, doi: 10.3989/gya.2004.v55.i2.158, 2004. DOI: https://doi.org/10.3989/gya.2004.v55.i2.158
  8. B. Camacho, I. López, D. García, M. González, M. Moreno-Álvarez y C. Medina, “Evaluación fisico-química de la semilla y del aceite de corozo (Acrocomia aculeata Jacq.)”. Grasas y aceites, vol. 56, no. 4, pp. 311-316, 2005.
  9. L. Masson, C. Camilo y E. Torija. “Caracterización del aceite de coquito de palma chilena (Jubaea chilensis)”. Rev. Grasas y aceites, vol. 59, no. 1, pp. 33-38, doi: 10.3989/gya.2008.v59.i1.487 (2008). DOI: https://doi.org/10.3989/gya.2008.v59.i1.487
  10. L. P. Aquino, S. V. Borges, F. Queiroz, R. Antoniassi, ans M. A. Cirillo, “Extraction of oil from pequi fruit (Caryocar Brasiliense, Camb.)
  11. using several solvents and their mixtures”, Grasas y Aceites, vol. 62, no. 3, pp. 245-252, 2011. DOI: https://doi.org/10.3989/gya.091010
  12. S. Raziq, F. Anwar, Z. Mahmood, S. A. Shahid, and R. Nadeem, “Characterization of seed oils from dierent varieties of watermelon Citrullus lanatus (Thunb.) from Pakistan”, Grasas y aceites, vol. 63, no. 4, pp. 365-372, 2012. DOI: https://doi.org/10.3989/gya.022212
  13. M. Manzoor, F. Anwar, M. Ashraf, and K. M. Alkharfy, “Physico-chemical characteristics of seed oils extracted from dierent apricot (Prunus armeniaca L.) varieties from Pakistan”, Grasas y aceites, vol. 63, no. 2, pp. 193-201, 2012. DOI: https://doi.org/10.3989/gya.095011
  14. Z. Y. Petkova, and G. A. Antova, “Changes in the composition of pumpkin seeds (Cucurbita moschata) during development and maturation”, Grasas y Aceites, vol. 66, no. 1, e058, DOI: https://doi.org/10.3989/gya.0706142
  16. S. Lannes, M. Medeiros, and L. Gioielli. “Rheological properties of cupuassu and cocoa fats”, Grasas y Aceites, vol. 55, no. 2, pp. 115-121, doi: 10.3989/gya.2004.v55.i2.154, 2004. DOI: https://doi.org/10.3989/gya.2004.v55.i2.154
  17. L. Quast, V. Luccas, and T. Kieckbusch, “Physical properties of pre-crystallized mixtures of cocoa butter and cupuassu fat”, Grasas
  18. y Aceites, vol. 62, no. 1, pp. 62-67, doi: 10.3989/gya.034010, 2011. DOI: https://doi.org/10.3989/gya.034010
  19. E. Kuskoski, A. Asuero, A. Troncoso, J. Mancini-Filho y R. Fett, “Aplicación de diversos métodos químicos para determinar actividad
  20. antioxidante em pulpa de frutos”, Cienc. Tecnol. Aliment., vol. 25, pp. 726-732, 2005. DOI: https://doi.org/10.1590/S0101-20612005000400016
  21. E. Alviárez, J.J. Mendez, B. Rojano, W. Murillo y C. Stringheta, “Poster Avaliação da atividade antioxidante da polpa, identificação dos
  22. ácidos graxos e propriedades da gordura do cupuaçu (Theobroma grandiflorum)”, Simposio Latinoamericano de Ciência de Alimentos,
  23. Ciencia de Alimentos: Impacto na nutrição e saúde, 2013.
  24. H. Yang, P. Protiva, B. Cui, C. MA, S. Baggett, and E. Hequet, “New Bioactive Polyphenols from Theobroma grandiflorum (“Cupuacü”)”, Journal of Natural Products, vol. 66, no. 11, DOI: https://doi.org/10.1021/np034002j
  25. pp. 1501-1504, 2003.
  26. E. Murillo y J. J. Méndez, Guía metodológica para la detección rápida de algunos núcleos secundarios y caracterización de una droga cruda, Universidad del Tolima, Facultad de Ciencias, Departamento de Química, GIPRONUT, 2011.
  27. P. Zuta, B. Simpson, X. Zhao, and L. Leclerc, “The eect of -tocopherol on the oxidation of mackerel oil”, Food Chem., vol. 100, no. 2, pp. 800-807, 2007. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2005.11.003
  28. B. Ou, D. Huang, M. Hampsch-Woodill, J. Flanagan, and E. Deemer, ”Analysis of antioxidant activities of common vegetables employing oxygen radical absorbance capacity (ORAC) and ferric reducing antioxidant power (FRAP) assays: a comparative study”, Journal of Agricultural and Food Chemistry, vol. 50, no. 11, DOI: https://doi.org/10.1021/jf0116606
  29. pp. 3122-3128, 2002.
  30. S. Litescu, S. Eremia, A. Tache, I. Vasilescu, and G. Radu, “The Use of Oxygen Radical Absorbance Capacity (ORAC) and Trolox Equivalent Antioxidant Capacity (TEAC) Assays in the Assessment of Beverages’ Antioxidant Properties”, en Processing and impact on antiantioxidants in beverages, Capítulo 25, p. 245-249, DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-404738-9.00025-8
  32. L.M. Melgarejo, M. S. Hernández, J. A. Barrera y M. Carrillo, Oferta y potencialidades de un banco de germoplasma del género Theobroma en el enriquecimiento de los sistemas productivos de la región amazónica, Instituto Amazónico de Investigaciones Científicas
  33. “SINCHI”, p. 157, 2006.
  34. J. Sánchez, E. Osorio, A. Montaño y M. Martínez, “Estudio del contenido em ácidos grasos de aceites monovarietales elaborados a partir de aceitunas producidas en la región extremeña”, Grasas y Aceites, vol. 54, no. 4, pp. 371-377, 2003.
  35. D. Rozo y L. Velasco, Automatización del proceso de esterilización en la extracción de aceite de palma africana, Instituto de Investigación y Desarrollo de Tecnologías Aplicadas, IIDTA, Universidad de Pamplona, Pamplona, Colombia, 2007.
  36. J. Lafont, M. Páez, and A. Portacio, A., “Extracción y caracterización fisicoquímica del aceite de la semilla (almendra) del marañón (Anacardium occidentale L)”, Información Tecnológica, vol. 22, no. 1, pp. 51-58, 2011. DOI: https://doi.org/10.4067/S0718-07642011000100007
  37. J. Santos, I. Santos, and A. Souza, “Eect of heating and cooling on rheological parameters of edible vegetable oils”, Journal of Food Engineering, vol. 67, no. 4, pp. 401-405, 2005. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jfoodeng.2004.05.007
  38. S. Mennickent, M. Bravo, C. Calvo y M. Avello, “Efectos pleiotrópicos de las estatinas”, Rev. méd. Chile, vol. 136, no. 6, pp.) 775-782, 2008. DOI: https://doi.org/10.4067/S0034-98872008000600014
  39. J. Liao, and U. Laufs, “Pleiotropic eects of statins”, Annu Rev Pharmacol Toxicol, vol. 45, pp. 89-118, 2005. DOI: https://doi.org/10.1146/annurev.pharmtox.45.120403.095748
  40. M. Gordon, “The development of oxidative rancidity in foods”. In: Antioxidants in ffood, Cambridge: CRC Press, pp. 10, 2001. DOI: https://doi.org/10.1201/9781439823057.pt1

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Artículos similares

<< < 1 2 

También puede {advancedSearchLink} para este artículo.