Skip to main navigation menu Skip to main content Skip to site footer

Vol. 14 No. 2 (2023)
Vol 14, Núm.2 (2023): Julio-Diciembre

Artículos de investigación / Research papers

Natural and Synthetic Efficiency of Hormones in Rooting and Development of Vegetative Structures of Tilo (Sambucos peruviana) in the High Tropics

https://doi.org/10.19053/01217488.v14.n2.2023.14194

Published 2023-07-19

  • Jorge Fonseca
    • ,
  • Emma Sofía Corredor Camargo
    • ,
  • Edwin Manuel Páez Barón

Jorge Fonseca
UNAD

Emma Sofía Corredor Camargo
Universidad Nacional Abierta y a Distancia

Edwin Manuel Páez Barón
Universidad Nacional Abierta y a Distancia,

Abstract

In the high tropics, silvopastoral systems are sustainable alternatives that enhance the availability and quality  fodder for animal freeding. These agroecosystems require the spread of forage shrubby species with high productive capacity such like Tilo (Sambucos peruviana). The aim of this study,  evaluates the efficiency of three natural hormones, four synthetic hormones and a soil biofertilizer in rooting and sprout tilo´s  cuttings. A randomized complete block design was employed, with twenty-one treatments,  with three repetitions each one, determining the behavior of six variables using ANOVA, normality (Shapiro-Wilk), homogeneity of variances (Levene's) and Post-hoc (Scott-knott or Bonferroni). The results show regarding the variable denominated number of sprouts,  the highest averages were reached with T12 (cinnamon) and T11 (aloe) and H0 is accepted (P> 0.05). Meanwhile for the other five variables, a statistically significant difference was identified (P< 0.05). In sprouts weight (g.) and sprout length (cm.) the best results were obtained with T3 (Gibberellic acid); for root length (cm.) the best behavior was with T10 (mycorrhiza and canaryseed); for root weight (g.) and plant height (cm.) the highest average was with T4 (ANA+ IBA).

Keywords

asexual propagation, forage legumes, rooting, silvopastoral systems.

PDF (Español)

References

  1. P. Baldassini, & J. M. Paruelo. “Agricultural and silvopastoral systems in the semi-arid chaco. Impacts on primary productivity | Sistemas agrícolas y silvopastoriles en el chaco semiárido. Impactos sobre la productividad primaria”. Ecologia Austral, 30(1), 45–62. 2020. https://doi.org/10.25260/EA.20.30.1.0.961
  2. E. M. Páez, M., Puerto, J. A. Fonseca-Carreño., & E. S. Corredor. Determinación de huellas ambientales, prácticas y estrategias integradas de manejo en sistemas ganaderos de trópico alto (Primera ed). Sello editorial UNAD. 2021
  3. A. da S. Cardoso, F. de O. Alari, de Andrade, N., Nascimento, T. da S., van Cleef, F. de O. S., Alves, B. J. R., Ruggieri, A. C., & Malheiros, E. B. Nitrous oxide emissions in silvopastoral systems: Key driving variables and seasonality. Agricultural and Forest Meteorology, 316, 108851. 2022 https://doi.org/10.1016/J.AGRFORMET.2022.108851
  4. M. Á. S. Monroy, & H. V. S. Moreno. Establecimiento de un sistema silvopastoril con Sambucus peruviana. Revista Sistemas de Producción Agroecológicos, 9(2), 97-111. 2018. http://bibliotecavirtual.dgb.umich.mx:8083/xmlui/bitstream/handle/DGB_UMICH/208/FITECMA-M-2015-1349.pdf?sequence=1&isAllowed=y
  5. W. F., Galindo & C. Avella. Memorias del Intercambio de Experiencias de Reconversión Ganadera en el contexto de la alta montaña, en el Complejo de Páramos Las Hermosas. 2020. http://repository.humboldt.org.co/bitstream/handle/20.500.11761/35571/19-14331-207PS.pdf?sequence=1
  6. F. Uribe, A. Zuluaga, E. Murgueitio, L. Valencia, A. Zapata, L. Solarte, L., Cuartas, C., Naranjo, J., Galindo, W., González, J., Sinisterra, J., Gómez, J., Molina, C., Molina, E., Galindo, A., Galindo, V. & Soto, R. Establecimiento y manejo de sistemas silvopastoriles. Manual 1, Proyecto Ganadería Colombiana Sostenible. FEDEGÁN – FNG , CIPAV, el Fondo para la Acción Ambiental y la Niñez (Fondo Acción), The Nature Conservancy (TNC), Ministerios de Agricultura y Desarrollo Rural y de Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial Global Environment Facility – GEF y el Directorio del Banco Mundial. Bogotá, Colombia. 2011
  7. D. Fonseca-López, C. E. R. Molano, L. E. N. Monroy, López, A. E. S., Concha, J. L. H., Ramírez, I. D. O., & Lagos, N. R. T. Caracterización nutricional y de producción de biomasa de Sambucus peruviana, Sambucus nigra y Morus alba en un banco forrajero. Ciencia en Desarrollo, 10(2), 23-32. 2019. https://revistas.uptc.edu.co/index.php/ciencia_en_desarrollo/article/view/9098/8635
  8. C. E. Rodríguez-Molano & N. J. Pulido-Suárez. Determinación del valor nutricional de bloques nutricionales con diferentes porcentajes de Sambucus peruviana y Zea mays. Ciencia y Agricultura, 15(1), 93-100. 2018. https://revistas.uptc.edu.co/index.php/ciencia_agricultura/article/view/7760
  9. M. Sánchez, M; Amado, M. Sauco (Sambucus nigra) como alternativa silvopastoril en el manejo sostenible de praderas en el trópico alto colombiano. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria, Corpoica. Tibaitatá. Colombia.2010. https://repository.agrosavia.co/bitstream/handle/20.500.12324/13488/44236_56514.pdf?sequence=1&isAllowed=y
  10. B. M. G. Atehortúa, Galvis, M. M. B., & Quirama, J. F. R. Características, manejo, usos y beneficios del saúco (Sambucus nigra L.) con énfasis en su implementación en sistemas silvopastoriles del Trópico Alto. RIAA, 6(1), 155-168. 2015. https://hemeroteca.unad.edu.co/index.php/riaa/article/view/1271/1607
  11. N. Chugchilan Toaquiza. Niveles de ácido naftalen acetico (ANA) y ácido indol butírico en la propagación vegetativa de mora (Rubus glaucus Benth) (Bachelor's thesis, Quevedo: UTEQ). 2011. https://repositorio.uteq.edu.ec/bitstream/43000/2222/1/T-UTEQ-0262.pdf
  12. R. Silva. Evaluación de la eficiencia de tres enraizantes naturales para propagación de mango (mangifera indica) por esquejes (Bachelor's thesis, La Libertad: Universidad Estatal Península de Santa Elena). 2021. https://repositorio.upse.edu.ec/bitstream/46000/6315/1/UPSE-TIA-2021-0046.pdf
  13. G. Bortoloso Pigatto, Nunes Gomes, E., De Cássia Tomasi, J., Portes Ferriani, A., & Deschamps, C. Effects of indolebutyric acid, stem cutting positions and substrates on the vegetative propagation of Stevia rebaudiana Bertoni. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 12(1), 202-211. 2018. http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S2011-21732018000100202
  14. M.A. Hilgert, Lazarotto, M., de Sá, L. C., Fior, C. S., & de Souza, P. V. D. Substrates and indole-3-butyric acid in mini-cuttings rooting of carya illinoinensis (wangenh) k. koch. floresta, 51(3), 721-730. 2021. https://revistas.ufpr.br/floresta/article/view/72466
  15. T.C. McDonough, Regan, D. J., & Nelson, A. S. Propagation protocol for blue elderberry (Sambucus nigra L. ssp. cerulea (Raf.) Bolli). Native Plants Journal, 19(3), 254-259. 2018. http://npj.uwpress.org/content/19/3/254.short
  16. A. Alvarado-Aguayo & Munzón-Quintana, M. Evaluación de la efectividad de gel de sábila y agua de coco como enraizantes naturales en diferentes sustratos para propagación asexual de árboles de Ficus benjamina. Agronomía Costarricense, 44(1), 65-78. 2020. https://www.scielo.sa.cr/scielo.php?pid=S0377-94242020000100065&script=sci_arttext
  17. S.P. Kumar & Kumari, B. R. Effect of primary and secondary somatic embryogenesis in Safflower (Carthamus tinctorius L) at morphological and biochemical levels. Am-Eurasian J Agric Environ Sci, 8(6), 784-792. 2010.
  18. C. Schwechheimer. Understanding gibberellic acid signaling—are we there yet?. Current opinion in plant biology, 11(1), 9-15. 2018. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1369526607001690#bib1
  19. M.J. García, Hernández, R.H., & Estévez M. Extracto de Aloe vera L. en la adaptación de vitroplantas de plátano. Instituto de Información Científica y Tecnológica. Avances, 22 (1). 2020
  20. S. Jansky & Hamernik, A. Rapid Cycling of Potato Tuber Generations by Overcoming Dormancy. American Journal of Potato Research, 92(1), 148–152. 2015. https://doi-org.bibliotecavirtual.unad.edu.co/10.1007/s12230-014-9415-7
  21. C.J. Tucuch, Cen, J. C., Kancab, R.A., & Tucuch, J.I. Uso de gel de Aloe vera en la producción de plántulas de Capsicum chinense. Biotecnia / XXIV (1): 116-121. 2020.
  22. S.K. Jaiswal, Mahajan, S., Chakraborty, A., Kumar, S., & Sharma, V. K. The genome sequence of Aloe vera reveals adaptive evolution of drought tolerance mechanisms. IScience, 24(2), 102079. 2021. https://doi.org/10.1016/J.ISCI.2021.102079
  23. N.M. Abdou, El-Saadony, F. M. A., Roby, M. H. H., Mahdy, H. A. A., El-Shehawi, A. M., Elseehy, M. M., El-Tahan, A. M., Abdalla, H., Saad, A. M., & Idris Badawy AbouSreea, A. Foliar spray of potassium silicate, aloe extract composite and their effect on growth and yielding capacity of roselle (Hibiscus sabdariffa L.) under water deficit stress conditions. Saudi Journal of Biological Sciences, xxxx. 2022. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2022.02.033
  24. J.T. Brosnan, Thoms, A. W., Breeden, G. K., & Sorochan, J. C. Effects of various plant growth regulators on the traffic tolerance of “Riviera” bermudagrass (Cynodon dactylon L.). HortScience, 45(6), 966–970. 2010. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.45.6.966
  25. E.H. Ervin & Zhang, X. Applied physiology of natural and synthetic plant growth regulators on turfgrasses. Handbook of Turfgrass Management and Physiology, 171–200. 2007. https://doi.org/10.1201/9781420006483.SEC4
  26. T. Głąb, Gondek, K., & Szewczyk, W. Effects of plant growth regulators on the mechanical traits of perennial ryegrass (Lolium perenne L.). Scientia Horticulturae, 288, 110351. 2021. https://doi.org/10.1016/J.SCIENTA.2021.110351
  27. Y. Ishii, Yamano, A., & Idota, S. Effects of Short-Day and Gibberellic Acid Treatments on Summer Vegetative Propagation of Napier Grass (Pennisetum purpureum Schumach). International Journal of Agronomy. 2016. https://doi.org/10.1155/2016/9606914

Downloads

Download data is not yet available.

Similar Articles

You may also start an advanced similarity search for this article.