Protocolo de micropropagación de mora-verde (Rubus erythroclados) nativa del Brasil
Resumen
El presente trabajo presenta el primer protocolo de micropropagación de morera verde (Rubus erythroclados), una especie fructífera nativa de Brasil. En la fase de multiplicación in vitro, se probaron tres concentraciones de benziladenina (BA) (0, 5 y 10 μM) combinadas con tres concentraciones de ácido indolbutírico (IBA) (0, 3 y 6 μM) en dos cultivos subsiguientes. En la etapa de enraizamiento, el enraizamiento in y ex vitro fue comparado después del tratamiento de inmersión rápida de las microestacas durante 10 segundos en solución de IBA (0; 2,46; 4,92 y 7,38 mM). Para el experimento in vitro, las microestacas se mantuvieron en recipientes de vidrio con medio de cultivo MS en una sala de crecimiento con condiciones de temperaturas controladas. Para el experimento ex vitro, las microestacas fueron plantadas en bandejas de poliestireno expandido con vermiculita, y se mantuvieron en una casa de vegetación con sistema de nebulización intermitente. La multiplicación de R. erythroclados fue obtenida con la adición de BA en el medio de cultivo, mientras que IBA redujo la emisión de brotes y aumentó la mortalidad de explantes. El enraizamiento ex vitro mostró los mejores resultados, llegando al 95,8% de microestacas enraizadas y aclimatadas sin tratamiento con IBA. Un protocolo simple y eficiente puede ser utilizado para la micropropagación de R. erythroclados con 5 μM de BA para multiplicación in vitro y enraizamiento de microestacas ex vitro en sistema de nebulización intermitente.
Palabras clave
Especie nativa, cultivo de tejidos, enraizamiento, microestaca, explante, reguladores de crecimiento
Biografía del autor/a
Paulo Mauricio Centenaro Bueno
Agronomist, PhD in Plant Sciences.
Professor at IFPR, teaching plant phisiology, plant breeding, fruitculture and anual crops.
Luiz Antonio Biasi
Departamento de Fitotecnia e Fitossanitarismo
Setor de Ciências Agrárias
Mauro Brasil Dias Tofanelli
Departamento de Fitotecnia e Fitossanitarismo
Setor de Ciências Agrárias
Citas
- Augusto, C.S.S., L.A. Biasi, and C.A. Telles. 2006. Enraizamento e aclimatização de plantas micropropagadas de amoreira-preta cv. Brazos. Rev. Bras. Frutic. 28(3), 473-476. Doi: 10.1590/S0100-29452006000300029
- Campagnolo, M.A. and R. Pio. 2012. Enraizamento de estacas caulinares e radiculares de cultivares de amoreira-preta coletadas em diferentes épocas, armazenadas a frio e tratadas com IBA. Ciênc. Rural 42, 232-237. Doi: 10.1590/S0103-84782012000200008
- Clapa, D., A. Fira and N. Joshee. 2013. An efficient ex vitro rooting and acclimatization method for horticultural plants using float hydroculture. HortScience 48(9), 1159-1167.
- Cordeiro, J., C.V. Roderjan, and W.A. Rodrigues. 2011. Plantas lenhosas da floresta ombrófila mista do parque municipal das Araucárias – Guarapuava (PR). Ambiência 7, 441-460. Doi: 10.5777/ambiencia.2011.03.03
- Debnath, S.C. 2003. Micropropagation of small fruits. pp. 465-506. In: Jain, S.M. and K. Ishii (eds.). Micropropagation of woody trees and fruits. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands. Doi: 10.1007/978-94-010-0125-0_15
- Debnath, S.C. 2004. Clonal propagation of dwarf raspberry (Rubus pubescens Raf.) through in vitro axillary shoot proliferation. Plant Growth Reg. 43, 179-186. Doi: 10.1023/B:GROW.0000040110.53216.6a
- Del Castillo, A.R. and A.A. Zerda. 1990. Estudios preliminaries para la propagación clonal in vitro de mora (Rubus glaucus L.). Agron. Colomb. 7(1-2), 17-25.
- Deng, R. and D.J. Donnelly. 1993. In vitro hardening of red raspberry through CO2 enrichment and relative humidity reduction on sugar-free medium. Can. J. Plant Sci. 73(4), 1105-1113. Doi: 10.4141/cjps93-149
- Erig, A.C., A. De Rossi, and G.R.L. Fortes. 2002. 6-benzilaminopurina e ácido indolbutírico na multiplicação in vitro da amoreira-preta (Rubus idaeus), cv. Tupy. Ciênc. Rural 32(5), 765-770. Doi: 10.1590/S0103-84782002000500005
- Jin, W., Y. Gu, and S.Z. Zhen. 1992. In vitro propagation of Rubus species. Sci. Hortic. 49(3-4), 335-340. Doi. 10.1016/0304-4238(92)90169-D
- Lazic, T. and D. Ruzic. 2007. Organogenesis in vitro from the leaf of blackberry cv. Cacanska Bestrna. Genetika 39, 69-78. Doi: 10.2298/GENSR0701069L
- Leitzke, L.N., C.R. Damiani, and M.W. Schuch. 2009. Meio de cultura, concentração de AIB e tempo de cultivo no enraizamento in vitro de amoreira-preta e framboeseira. Rev. Bras. Frutic. 31(2), 582-587. Doi: 10.1590/S0100-29452009000200037
- Leitzke, L.N., C.R. Damiani, and M.W. Schuch. 2010. Influência do meio de cultura, tipo e concentração de citocininas na multiplicação in vitro de amoreira-preta e framboeseira. Ciênc Agrotec. 34(2), 352-360. Doi: 10.1590/S1413-70542010000200012
- Maia, A.J. and R.V. Botelho. 2008. Reguladores vegetais no enraizamento de estacas lenhosas da amoreira-preta cv. Xavante. Semina: Ciênc. Agrár. 29, 323-330. Doi: 10.5433/1679-0359.2008v29n2p323
- Murashige, T. and F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant 15, 473-479. Doi: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
- Oliveira, A.F., N.N.J. Chalfun, A.A. Alvarenga, J. Vieira Neto, R. Pio, and D.L. Oliveira. 2009. Estaquia de oliveira em diferentes épocas, substratos e doses de AIB diluído em NaOH e álcool. Ciênc. Agrotec. 33(1), 79-85. Doi: 10.1590/S1413-70542009000100011
- Oliveira, R.P. and A.F.P. Nino. 2009. Potencial de multiplicação in vitro de cultivares de framboeseira. Rev. Bras. Frutic. 31(1), 280-284. Doi: 10.1590/S0100-29452009000100040
- Oliveira, R.P., A.F.P. Nino, and L.V. Ferreira. 2008. Potencial de multiplicação in vitro de cultivares de amoreira-preta. Rev. Bras. Frutic. 30(3), 585-589. Doi: 10.1590/S0100-29452008000300004
- Pasa, M.S., G.L. Carvalho, M.W. Schuch, J.D. Schmitz, M.M. Torchelsen, G.K. Nickel, L.R. Sommer, T.S. Lima, and S.S. Camargo. 2012. Qualidade de luz e fitorreguladores na multiplicação e enraizamento in vitro da amoreira-preta ‘Xavante’. Ciênc. Rural 42(8), 1392-1396. Doi: 10.1590/S0103-84782012000800010
- Pelizza, T.R., J. Muniz, P. Camargo, A.A. Kretzschmar, and L. Rufato. 2013. Enraizamento ex vitro e aclimatização de plântulas micropropagadas de amoreira-preta 'Xavante'. Rev. Bras. Frutic. 35(1), 329-332. Doi: 10.1590/S0100-29452013000100039
- Poothong, S. and B.M. Reed. 2015. Increased CaCl2, MgSO4, and KH2PO4 improve the growth of micropropagated red raspberries. In Vitro Cell Dev. Biol-Plant 51, 648-658. Doi: 10.1007/s11627-015-9720-y
- Sigarroa-Rieche, A.K. and C.L. García-Delgado. 2011. Establecimiento y multiplicación in vitro de mora de castilla (Rubus glaucus Benth) variedade sin espinas, mediante ápices meristemáticos. Acta Agron. 60(4), 347-354.
- Taiz, L. and E. Zeiger. 2013. Fisiologia vegetal. 5a ed. Artmed, Porto Alegre, Brazil.
- Villa, F., M. Pasqual, F.A. Assis, L.A.S. Pio, and G.A. Assis. 2008. Crescimento in vitro de amoreira-preta: efeito de reguladores de crescimento e da cultivar. Ciênc. Agrotec. 32(6), 1754-1759. Doi: 10.1590/S1413-70542008000600012
- Welander, M. 1985. In vitro culture of raspberry (Rubus idaeus) for mass propagation. J. Hortic. Sci. 60(4), 493-499. Doi: 10.1080/14620316.1985.11515656
- Wu, J., S.A. Miller, H.K. Hall, and P.A. Mooney. 2009. Factors affecting the efficiency of micropropagation from lateral buds and shoot tips of Rubus. Plant Cell Tiss. Org. 99, 17-25. Doi: 10.1007/s11240-009-9571-5